Análisis de la cinética de expresión de genes durante la transición de micelio a levadura y la germinación levadura a micelio en Paracoccidioides brasiliensis

Orville Hernández, Diana Tamayo, Isaura Torres, Ángela Restrepo, Juan Guillermo McEwen, Ana María García, .

Palabras clave: Paracoccidioides, paracoccidioidomicosis, levaduras, micelio, germinación, expresión génica

Resumen

Introducción. La paracoccidioidomicosis es una micosis sistémica causada por el hongo termodimorfo Paracoccidioides brasiliensis. En tejidos y cultivos a 37 °C crece como levadura, mientras que
a temperaturas menores de 24 °C crece como un moho. Sin embargo, se conoce poco sobre los genes que regulan estos procesos.
Objetivo. Se evaluó la cinética de expresión de algunos genes en P. brasiliensis mediante el proceso de dimorfismo incluida la transición del micelio a levadura y de la germinación de levadura a micelio.
Materiales y métodos. Se optimizó una PCR cuantitativa en tiempo real (RT-qPCR) para medir la expresión de diez genes relacionados con diversas funciones celulares que incluyeron: síntesis de
pared, respuesta al estrés oxidativo, respuesta al choque térmico, metabolismo, procesamiento de proteínas, trasporte de solutos a través de membranas y transducción de señales, todo ello a diferentes tiempos durante la transición de micelio a levadura, así como de la germinación de levadura a micelio. Resultados. Se encontró que los genes relacionados con síntesis de pared, metabolismo y transducción de señales, se expresaban de manera diferencial y con regulación positiva durante la germinación levadura a micelio, mientras que algunos genes relacionados con respuesta a choque térmico y a síntesis de pared estaban sobreexpresados en la transición de micelio a levadura. Los genes restantes se regularon de manera diferencial en ambos procesos.
Conclusiones. En este trabajo se confirma la regulación positiva de algunos genes relacionados con los cambios morfológicos de las fases levadura y micelio en P. brasiliensis, procesos biológicos que
juegan un papel de importancia durante la interacción huésped-parásito y durante la adaptación del hongo al ambiente, respectivamente.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.
  • Orville Hernández Instituto de Biología, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia
  • Diana Tamayo Instituto de Biología, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia Unidad de Biología Celular y Molecular, Corporación para Investigaciones Biológicas, Medellín, Colombia.
  • Isaura Torres Instituto de Biología, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia Unidad de Biología Celular y Molecular, Corporación para Investigaciones Biológicas, Medellín, Colombia.
  • Ángela Restrepo Unidad de Biología Celular y Molecular, Corporación para Investigaciones Biológicas, Medellín, Colombia.
  • Juan Guillermo McEwen Unidad de Biología Celular y Molecular, Corporación para Investigaciones Biológicas, Medellín, Colombia. Escuela de Medicina, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia
  • Ana María García Unidad de Biología Celular y Molecular, Corporación para Investigaciones Biológicas, Medellín, Colombia.

Referencias bibliográficas

1. Restrepo A, McEwen JG, Castaneda E. The habitat of Paracoccidioides brasiliensis: how far from solving the riddle? Med Mycol. 2001;39:233-41.
2. Restrepo A, Tobón A. Paracoccidioides brasiliensis. In: Mandell B, Bennett J, Dolin R, editors. Mandell, Douglas and Bennett's Principles and Practice of Infectious Diseases. 7th ed. Philadelphia: Churchill Livingston, Elsevier; 2009. p. 3357-64.
3. Klein BS, Tebbets B. Dimorphism and virulence in fungi. Curr Opin Microbiol. 2007;10:314-9.
4. Restrepo A, Tobón A, Agudelo C. Paracoccidioidomycosis. In: Hospenthal A, Rinaldi M, editors. Infectious Diseases: diagnosis and treatment of human mycoses. Totowa, New Jersey: Humana Press; 2008. p. 331- 42.
5. Brummer E, Castaneda E, Restrepo A. Paracoccidioidomycosis: an update. Clin Microbiol Rev. 1993;6:89-117.
6. Loose D, Stover E, Restrepo A, Stevens D, Feldman D. Estradiol binds to a receptor-like cytosol binding protein and initiates a biological response in Paracoccidioides brasiliensis. Proc Natl Acad Sci USA. 1983;80:7659-63.
7. Stover E, Schar G, Clemons K, Stevens D, Feldman D. Estradiol-binding proteins from mycelial and yeast-form cultures of Paracoccidioides brasiliensis. Infect Immun. 1986;51:199-203.
8. McEwen J, Bedoya V, Patino M, Salazar M, Restrepo A. Experimental murine paracoccidiodomycosis induced by the inhalation of conidia. J Med Vet Mycol. 1987;25:165-75.
9. Bagagli E, Theodoro RC, Bosco SM, McEwen JG. Paracoccidioides brasiliensis: phylogenetic and ecological aspects. Mycopathologia. 2008;165:197-207.
10. Casadevall A, Steenbergen JN, Nosanchuk JD. ‘Ready made' virulence and ‘dual use' virulence factors in pathogenic environmental fungi--the Cryptococcus neoformans paradigm. Curr Opin Microbiol. 2003; 6:332-7.
11. Bastos KP, Bailao AM, Borges CL, Faria FP, Felipe MS, Silva MG, et al. The transcriptome analysis of early morphogenesis in Paracoccidioides brasiliensis mycelium reveals novel and induced genes potentially associated to the dimorphic process. BMC microbiol. 2007;7:29.
12. Nunes LR, Costa de Oliveira R, Leite DB, da Silva VS, dos Reis Marques E, da Silva Ferreira ME, et al. Transcriptome analysis of Paracoccidioides brasiliensis cells undergoing mycelium-to-yeast transition. Eukaryot Cell. 2005;4:2115-28.
13. Goldman GH, dos Reis Marques E, Duarte Ribeiro DC, de Souza Bernardes LA, Quiapin AC, Vitorelli PM, et al. Expressed sequence tag analysis of the human pathogen Paracoccidioides brasiliensis yeast phase: identification of putative homologues of Candida albicans virulence and pathogenicity genes. Eukaryot Cell. 2003;2:34-48.
14. Garcia AM, Hernandez O, Aristizabal BH, De Souza Bernardes LA, Puccia R, Naranjo TW, et al. Gene expression analysis of Paracoccidioides brasiliensis transition from conidium to yeast cell. Med Mycol. 2010;48:147-54.
15. Queiroz-Telles F. Paracoccidioides brasiliensis: Ultrastructural findings. In: Franco M, Restrepo A, Del Negro G, editors. Paracoccidioidomycosis. Boca Raton, FL.: CRC Press; 1994.p. 27-48.
16. Ramirez Martinez J. Paracoccidioides brasiliensis: conversion of yeastlike forms into mycelia in submerged culture. J Bacteriol. 1971;105:523-6.
17. Restrepo BI, McEwen JG, Salazar ME, Restrepo A. Morphological development of the conidia produced by Paracoccidioides brasiliensis mycelial form. J Med Vet Mycol. 1986;24:337-9.
18. Garcia AM, Hernandez O, Aristizabal BH, Cano LE, Restrepo A, McEwen JG. Identification of genes associated with germination of conidia to form mycelia in the fungus Paracoccidioides brasiliensis. Biomedica. 2009;29:403-12.
19. Torres FA, Vilaca R, Pepe De Moraes LM, Reis VC, Felipe MS. Expression of a kexin-like gene from the human pathogenic fungus Paracoccidioides brasiliensis in Saccharomyces cerevisiae. Med Mycol. 2008;46:385-8.
20. Venancio EJ, Daher BS, Andrade RV, Soares CM, Pereira IS, Felipe MS. The kex2 gene from the dimorphic and human pathogenic fungus Paracoccidioides brasiliensis. Yeast. 2002;19:1221-31.
21. Venancio EJ, Kyaw CM, Mello CV, Silva SP, Soares CM, Felipe MS, et al. Identification of differentially expressed transcripts in the human pathogenic fungus Paracoccidioides brasiliensis by differential display. Med Mycol. 2002;40:45-51.
22. Enderlin CS, Selitrennikoff CP. Cloning and characterization of a Neurospora crassa gene required for (1,3) beta-glucan synthase activity and cell wall formation. Proc Natl Acad Sci USA. 1994;91:9500-4.
23. Rappleye CA, Eissenberg LG, Goldman WE. Histoplasma capsulatum alpha-(1,3)-glucan blocks innate immune recognition by the beta-glucan receptor. Proc Natl Acad Sci USA. 2007;104:1366-70.
24. Rappleye CA, Engle JT, Goldman WE. RNA interference in Histoplasma capsulatum demonstrates a role for alpha-(1,3)-glucan in virulence. Mol Microbiol. 2004;53:153-65.
25. Sorais F, Barreto L, Leal JA, Bernabe M, San-Blas G, Nino-Vega GA. Cell wall glucan synthases and GTPases in Paracoccidioides brasiliensis. Med Mycol. 2010;48:35-47.
26. Van Aken O, Giraud E, Clifton R, Whelan J. Alternative oxidase: a target and regulator of stress responses. Physiol Plant. 2009;137:354-61.
27. Restrepo A, Jimenez B. Growth of Paracoccidioides brasiliensis yeast phase in a chemically defined culture medium. J Clin Microbiol. 1980;12:279-81.
28. Calich VL, Kipsnis TL, Mariano M, Fava Neto C, Da Silva D. The activation of the complement system by Paracoccidioidis brasiliensis in vitro: Its opsonic efect and possible significance for an in vivo model of infection. Clin Immunol Immunopathol. 1979;12:20-30.
29. Livak KJ, Schmittgen TD. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method. Methods. 2001;25:402-8.
30. Jakob U, Buchner J. Assisting spontaneity: the role of Hsp90 and small Hsps as molecular chaperones. Trends Biochem Sci. 1994;19:205-11.
31. Lindquist S, Craig EA. The heat-shock proteins. Annu Rev Genet. 1988;22:631-77.
32. Nadeau K, Das A, Walsh CT. Hsp90 chaperonins possess ATPase activity and bind heat shock transcription factors and peptidyl prolyl isomerases. The Journal of Biological Chemistry. 1993;268:1479-87.
33. Felipe MS, Andrade RV, Petrofeza SS, Maranhao AQ, Torres FA, Albuquerque P, et al. Transcriptome haracterization of the dimorphic and pathogenic fungus aracoccidioides brasiliensis by EST analysis. Yeast. 003;20:263-71.
34. Nicola AM, Andrade RV, Dantas AS, Andrade PA,Arraes FB, Fernandes L, et al. The stress responsive and morphologically regulated hsp90 gene from Paracoccidioides brasiliensis is essential to cell viability. BMC Microbiol. 2008;8:158.
35. Shapiro RS, Uppuluri P, Zaas AK, Collins C, Senn H, Perfect JR, et al. Hsp90 orchestrates temperaturedependent Candida albicans morphogenesis via Ras1-PKA signaling. Curr Biol. 2009;19:621-9.
36. Parente JA, Borges CL, Bailao AM, Felipe MS, Pereira M, de Almeida Soares CM. Comparison of transcription of multiple genes during mycelia transition to yeast cells of Paracoccidioides brasiliensis reveals insights to fungal differentiation and pathogenesis. Mycopathologia. 2008;165:259-73.
37. Gessler NN, Aver'yanov AA, Belozerskaya TA. Reactive oxygen species in regulation of fungal development. Biochemistry (Mosc). 2007;72:1091-109.
38. Saijo T, Miyazaki T, Izumikawa K, Mihara T, Takazono T, Kosai K, et al. Skn7p is involved in oxidative stress response and virulence of Candida glabrata. Mycopathologia. 2010;169:81-90.
39. He XJ, Mulford KE, Fassler JS. Oxidative stress function of the Saccharomyces cerevisiae Skn7 receiver domain. Eukaryot Cell. 2009;8:768-78.
40. Stock AM, Robinson VL, Goudreau PN. Two-component signal transduction. Annu Rev Biochem. 2000;69:183-215.
41. Sinclair DA, Dawes IW. Genetics of the synthesis of serine from glycine and the utilization of glycine as sole nitrogen source by Saccharomyces cerevisiae. Genetics. 1995;140:1213-22.
42. Pao GM, Saier MH Jr. Response regulators of bacterial signal transduction systems: selective domain shuffling during evolution. J Mol Evol. 1995;40:136-54.
43. Walmsley AR, Barrett MP, Bringaud F, Gould GW. Sugar transporters from bacteria, parasites and mammals: structure-activity relationships. Trends Biochem Sci. 1998;23:476-81.
44. Steiner HY, Naider F, Becker JM. The PTR family: a new group of peptide transporters. Mol Microbiol. 1995;16:825-34.
45. Seidah NG, Chretien M. Eukaryotic protein processing: endoproteolysis of precursor proteins. Curr Opin Biotechnol. 1997;8:602-7.
46. Oka T, Hamaguchi T, Sameshima Y, Goto M, Furukawa K. Molecular characterization of protein O-mannosyltransferase and its involvement in cell-wall synthesis in Aspergillus nidulans. Microbiology. 2004;150:1973-82.
47. Almeida AJ, Carmona JA, Cunha C, Carvalho A, Rappleye CA, Goldman WE, et al. Towards a molecular genetic system for the pathogenic fungus Paracoccidioides brasiliensis. Fungal Genet Biol. 2007;44:1387-98.
Cómo citar
1.
Hernández O, Tamayo D, Torres I, Restrepo Ángela, McEwen JG, García AM. Análisis de la cinética de expresión de genes durante la transición de micelio a levadura y la germinación levadura a micelio en Paracoccidioides brasiliensis. biomedica [Internet]. 30 de junio de 2011 [citado 29 de marzo de 2024];31(4):570-9. Disponible en: https://revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/441

Algunos artículos similares:

Sección
Artículos originales

Métricas

Estadísticas de artículo
Vistas de resúmenes
Vistas de PDF
Descargas de PDF
Vistas de HTML
Otras vistas
Crossref Cited-by logo
QR Code