Efecto inhibitorio de extractos de Renealmia alpinia Rottb. Maas (Zingiberaceae) sobre el veneno de Bothrops asper (mapaná)

Arley Camilo Patiño, Jessica López, Mónica Aristizábal, Juan Carlos Quintana, Dora Benjumea, .

Palabras clave: Renealmia alpinia, etnofarmacología, mordedura de serpiente, veneno, actividad analgésica, toxicidad aguda.

Resumen

Introducción. La medicina tradicional es una invaluable fuente de investigación de nuevos remedioscomo complemento para el tratamiento del accidente ofídico, considerado como un grave problema desalud pública a nivel mundial.

Objetivo. Este trabajo de investigación pretende comprobar la capacidad de neutralizar los efectoshemorrágicos, coagulantes y proteolíticos, de los extractos de hojas de Renealmia alpinia, usadatradicionalmente por los indígenas del Chocó (Colombia) contra la mordedura de la serpiente Bothropsasper, causante de la gran mayoría de los accidentes ofídicos en nuestro país.

Materiales y métodos. Se llevaron a cabo ensayos de toxicidad aguda y de actividad analgésica in vivo de R. alpinia. Además, se hicieron ensayos in vitro sobre inhibición de las actividades coagulante,hemolítica y proteolítica del veneno de

Resultados. El presente estudio demuestra que R. alpinia no produce efectos tóxicos en animales deexperimentación; además, presenta efectos analgésicos in vivo y antiofídicos in vitro, y protege contralos efectos letales del veneno de B. asper, in vivo.

Conclusión. Renealmia alpinia puede ser una buena alternativa terapéutica como complemento altratamiento con antiveneno en el accidente ofídico, por sus efectos analgésicos y antiofídicos.

doi: http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v32i3.591

 

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  • Arley Camilo Patiño Programa de Ofidismo-Escorpionismo, Universidad de Antioquia, Medellín, Antioquia, Colombia
  • Jessica López Programa de Ofidismo-Escorpionismo, Universidad de Antioquia, Medellín, Antioquia, Colombia
  • Mónica Aristizábal Programa de Ofidismo-Escorpionismo, Universidad de Antioquia, Medellín, Antioquia, Colombia
  • Juan Carlos Quintana Programa de Ofidismo-Escorpionismo, Universidad de Antioquia, Medellín, Antioquia, Colombia Desarrollo de Programas e Investigación, Dirección Nacional de Posgrados, Universidad Cooperativa de Colombia, Medellín, Colombia
  • Dora Benjumea Programa de Ofidismo-Escorpionismo, Universidad de Antioquia, Medellín, Antioquia, Colombia Facultad de Química Farmacéutica, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia

Referencias bibliográficas

World Health Organization. Listado de enfermedades desatendidas. 2009. Fecha de consulta: 13 de agosto de 2011. Disponible en: http://www.who.int/neglected_diseases/diseases/en/.

Williams D, Gutiérrez JM, Harrison R, Warrell DA, White J, Winkel KD, et al. The Global Snake Bite Initiative: An antidote for snake bite. Lancet. 2010;375:89-91. http://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(09)61159-4

Gutiérrez JM, León G, Burnouf T. Antivenoms for the treatment of snakebite envenomings: The road ahead. Biologicals. 2011;39:129-42. http://dx.doi.org/10.1016/j.biologicals.2011.02.005

Ault SK, Nicholls RS. Integrated approach to neglected tropical diseases in Latin America and the Caribbean: An ethical imperative to reach justice and social equity.

Biomédica. 2010;30:159-63.

Organización Panamericana de la Salud. Informe final de la consulta técnica sobre accidentes con animales ponzoñosos en Latino América. Sao Paulo: Organización Panamericana de la Salud; 2007. p. 50.

Otero-Patiño R. Epidemiological, clinical and therapeutic aspects of Bothrops asper bites. Toxicon. 2009;54:998-1011. http://dx.doi.org/10.1016/j.toxicon.2009.07.001

Instituto Nacional de Salud. Informe anual de accidente ofídico, 2010. Bogotá, D.C.: Instituto Nacional de Salud; 2011. p. 9-10.

Chipaux JP, Goyffon M. Venoms, antivenoms and immunotherapy. Toxicon. 1998;36:823-46. http://dx.doi.org/10.1016/S0041-0101(97)00160-8

Maiorano VA, Marcussi S, Daher MA, Oliveira CZ, Couto LB, Gomes OA, et al. Antiophidian properties of the aqueous extract of Mikania glomerata. J Ethnopharmacol. 2005;102:364-70. http://dx.doi.org/10.1016/j.jep.2005.06.039

Oliveira CZ, Maiorano VA, Marcussi S, Sant’ana CD, Januario AH, Lourenco MV, et al. Anticoagulant and antifibrinogenolytic properties of the aqueous extract from Bauhinia forficata against snake venoms. J Ethnopharmacol. 2005;98:213-6. http://dx.doi.org/10.1016/j.jep.2004.12.028

Otero R, Núñez V, Barona J, Fonnegra R, Jiménez SL, Osorio RG, et al. Snakebites and ethnobotany in the northwest region of Colombia. Part III: Neutralization of the haemorrhagic effect of Bothrops atrox venom. J Ethnopharmacol. 2000;73:233-41. http://dx.doi.org/10.1016/S0378-8741(00)00321-4

Otero R, Núñez V, Jiménez SL, Fonnegra R, Osorio RG, García ME, et al. Snakebites and ethnobotany in the northwest region of Colombia: Part II: Neutralization of lethal and enzymatic effects of Bothrops atrox venom. J Ethnopharmacol. 2000;71:505-11. http://dx.doi.org/10.1016/S0378-8741(99)00197-X

Alam MI, Gomes A. Snake venom neutralization by Indian medicinal plants (Vitex negundo and Emblica officinalis) root extracts. J Ethnopharmacol. 2003;86:75-80. http://dx.doi.org/10.1016/S0378-8741(03)00049-7

Borges MH, Alves DL, Raslan DS, Pilo-Veloso D, Rodrigues VM, Homsi-Brandeburgo MI, et al. Neutralizing properties of Musa paradisiaca L. (Musaceae) juice on phospholipase A2, myotoxic, hemorrhagic and lethal activities of crotalidae venoms. J Ethnopharmacol. 2005;98:21-9. http://dx.doi.org/10.1016/j.jep.2004.12.014

Pereáñez JA, Jiménez SL, Quintana JC, Núñez V, Fernández M, Restrepo Y. Inhibición de las actividades proteolítica, coagulante y hemolítica indirecta inducidas por el veneno de Bothrops asper por extractos etanólicos de tres especies de heliconias. Vitae. 2008;15:157-64.

Otero R, Fonnegra R, Jiménez SL, Núñez V, Evans N, Alzate SP, et al. Snakebites and ethnobotany in the northwest region of Colombia: Part I: Traditional use of plants. J Ethnopharmacol. 2000;71:493-504. http://dx.doi.org/10.1016/S0378-8741(00)00243-9

Melo PA, do Nascimento MC, Mors WB, Suarez-Kurtz G. Inhibition of the myotoxic and hemorrhagic activities of crotalid venoms by Eclipta prostrata (Asteraceae) extracts

and constituents. Toxicon. 1994;32:595-603. http://dx.doi.org/10.1016/0041-0101(94)90207-0

Mors W. Plants active against snakebite. Economic y Medicinal Plant Research. 1991:5;353-73.

Oliveira CZ, Maiorano VA, Marcussi S, Sant’ana CD, Januario AH, Lourenco, et al. Anticoagulant and antifibrinogenolytic properties of the aqueous extract from Bauhinia forficata against snake venoms. J Ethnopharmacol. 2005;98:213-6. http://dx.doi.org/10.1016/j.jep.2004.12.028

Coe FG. Rama midwifery in eastern Nicaragua. J Ethnopharmacol. 2008;117:136-57. http://dx.doi.org/10.1016/j.jep.2008.01.027

Coelho-Ferreira M. Medicinal knowledge and plant utilization in an Amazonian coastal community of Maruda, Para State (Brazil). J Ethnopharmacol. 2009;126:159-75.

http://dx.doi.org/10.1016/j.jep.2009.07.016 22. Lognay G, Marlier M, Severin M, Haugruge E, Gibon V, Trevejo E. On the characterization of some terpenes from Renealmia alpinia Rottb. (Maas) Oleoresin. Flavour Frag J. 1991;6:87-91.

Yang SW, Zhou BN, Malone S, Werkhoven MC, van Troon F, Wisse JH, et al. A new labdane diterpenoid from Renealmia alpinia collected in the Suriname rainforest. J Nat Prod. 1999;62:1173-4. http://dx.doi.org/10.1021/np990055i

Zhou BN, Baj NJ, Glass TE, Malone S, Werkhoven MC, van Troon F, et al. Bioactive labdane diterpenoids from Renealmia alpinia collected in the Suriname rainforest. J Nat Prod. 1997;60:1287-93. http://dx.doi.org/10.1021/np970233c

Lomonte B, León G, Angulo Y, Rucavado A, Núñez V. Neutralization of Bothrops asper venom by antibodies, natural products and synthetic drugs: Contributions to understanding snakebite envenomings and their treatment. Toxicon. 2009;54:1012-28. http://dx.doi.org/10.1016/j.toxicon.2009.03.015

Núñez V, Otero R, Barona J, Fonnegra R, Jiménez SL, Osorio RG, et al. Inhibition of the toxic effects of Lachesis muta, Crotalus durissus cumanensis and Micrurus mipartitus

snake venoms by plant extracts. Pharm Biol. 2004;42:49-56. http://dx.doi.org/10.1080/13880200490505483

Alarcón JC, Martínez D, Quintana JC, Jiménez SL, Díaz A, Jiménez I. Propagación in vitro de Renealmia alpinia (ROTTB), planta con actividad antiofídica. Vitae. 2008;15:61-9.

Organization for Economic Cooperation and Development. Guidelines for testing of chemical. Guideline 423, acute oral toxicity– acute toxic class method. Paris: OECD; 2001.

Gutiérrez JM, Ávila C, Rojas E, Cerdas L. An alternative in vitro method for testing the potency of the polyvalent antivenom produced in Costa Rica. Toxicon. 1988;26:411-3.

http://dx.doi.org/10.1016/0041-0101(88)90010-4 30. Theakston RD, Reid HA. Development of simple standard assay procedures for the characterization of snake venom. Bull World Health Organ. 1983;61:949-56.

Wang WJ, Shih CH, Huang TF. A novel P-I class metalloproteinase with broad substrate-cleaving activity, agkislysin, from Agkistrodon acutus venom. Biochem Biophys Res Commun. 2004;324:224-30. http://dx.doi.org/10.1016/j.bbrc.2004.09.031

Siegmund E, Cadmus R, Lu G. A method for evaluating both non-narcotic and narcotic analgesics. Proc Soc Exp Biol Med. 1957;95:729-31. http://dx.doi.org/10.3181/00379727-

-23345

Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 1970;227:680-5. http://dx.doi.org/10.1038/227680a0

Doménech J. Bioestadística. Métodos estadísticos para investigadores., 3ª edición. Barcelona: Editorial Herder; 1980. p. 642

Dunnett CW, Gent M. Significance testing to establish equivalence between treatments, with special reference to data in the form of 2 x 2 tables. Biometrics. 1977;33:593-602.

Haslam E. Natural polyphenols (vegetable tannins) as drugs: Possible modes of action. J Nat Prod. 1996;59:205-15. http://dx.doi.org/10.1021/np960040+

Iglesias CV, Aparicio R, Rodrigues-Simioni L, Camargo EA, Antunes E, Marangoni S, et al. Effects of morin on snake venom phospholipase A2 (PLA2). Toxicon. 2005;46:751-8.http://dx.doi.org/10.1016/j.toxicon.2005.07.017

McAllister TA, Bae HD, Yanke LJ, Cheng KJ, Muir A. Effect of condensed tannins from birdsfoot trefoil on endoglucanase activity and the digestion of cellulose filter

paper by ruminal fungi. Can J Microbiol. 1994;40:298-305.

McDonald M, Mila I, Scalbert A. Precipitation of metal ions by plant polyphenols: Optimal conditions and origin of precipitation. J Agr Food Chem. 1996;44:599-606. http://dx.doi.org/10.1021/jf950459q

Markland FS. Snake venoms and the hemostatic system. Toxicon. 1998;36:1749-800. http://dx.doi.org/10.1016/S0041-0101(98)00126-3

Otero-Patino R, Cardoso JL, Higashi HG, Núñez V, Díaz A, Toro MF, et al. A randomized, blinded, comparative trial of one pepsin-digested and two whole IgG antivenoms for

Bothrops snake bites in Urabá, Colombia. The Regional Group on Antivenom Therapy Research (REGATHER). Am J Trop Med Hyg. 1998;58:183-9.

Otero R, Gutiérrez J, Mesa B, Duque E, Rodríguez O, Arango L, et al. Complications of Bothrops, Porthidium, and Bothriechis snakebites in Colombia. A clinical and epidemiological study of 39 cases attended in a university hospital. Toxicon. 2002;40:1107-14. http://dx.doi.org/10.1016/S0041-0101(02)00104-6

Borges MH, Soares AM, Rodrigues VM, Oliveira F, Fransheschi AM, Rucavado A, et al. Neutralization of proteases from Bothrops snake venoms by the aqueous extract from Casearia sylvestris (Flacourtiaceae). Toxicon. 2001;39:1863-9. http://dx.doi.org/10.1016/S0041-0101(01)00169-6

Gowda T. Interaction of snake venom phospholipases A2 with plant isolates. En: Kini RM, editor. Venom phospholipase A2 enzymes. Chichester: Willey; 1997. p. 205-21.

Okonogi T, Hattori Z, Ogiso A, Mitsui S. Detoxification by persimmon tannin of snake venoms and bacterial toxins. Toxicon. 1979;17:524-7. http://dx.doi.org/10.1016/0041-0101

(79)90287-3

Mors WB, do Nascimento MC, Parente JP, da Silva MH, Melo PA, Suarez-Kurtz G. Neutralization of lethal and myotoxic activities of South American rattlesnake venom by extracts and constituents of the plant Eclipta prostrata (Asteraceae). Toxicon. 1989;27:1003-9.

Tan HH. Epidemiology of snakebites from a general hospital in Singapore: A 5-year retrospective review (2004-2008). Ann Acad Med Singap. 2010;39:640-7.

Cintra-Francischinelli M, Caccin P, Chiavegato A, Pizzo P, Carmignoto G, Angulo Y, et al. Bothrops snake myotoxins induce a large efflux of ATP and potassium with spreading of cell damage and pain. Proc Natl Acad Sci USA. 2010;107:14140-5. http://dx.doi.org/10.1073/pnas.1009128107

Lavonas EJ, Kokko J, Schaeffer TH, Mlynarchek SL, Bogdan GM, Dart RC. Short-term outcomes after Fab antivenom therapy for severe crotaline snakebite. Ann Emerg Med. 2011;57:128-37. http://dx.doi.org/10.1016/j.annemergmed.2010.06.550

Mekonnen T, Urga K, Engidawork E. Evaluation of the diuretic and analgesic activities of the rhizomes of Rumex abyssinicus Jacq in mice. J Ethnopharmacol. 2010;127:433-9.

http://dx.doi.org/10.1016/j.jep.2009.10.020 51. Leal LK, Ferreira AA, Bezerra GA, Matos FJ, Viana GS. Antinociceptive, anti-inflammatory and bronchodilator activities of Brazilian medicinal plants containing coumarin: A comparative study. J Ethnopharmacol. 2000;70:151-9.http://dx.doi.org/10.1016/S0378-8741(99)00165-8

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1.
Patiño AC, López J, Aristizábal M, Quintana JC, Benjumea D. Efecto inhibitorio de extractos de Renealmia alpinia Rottb. Maas (Zingiberaceae) sobre el veneno de Bothrops asper (mapaná). biomedica [Internet]. 26 de marzo de 2012 [citado 18 de marzo de 2024];32(3):365-74. Disponible en: https://revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/591
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2012-03-26
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