Mosquitos (Diptera: Culicidae) en el caserío de Chingalé, Santander, donde se registró un caso humano de encefalitis equina venezolana
Palabras clave:
virus de la encefalitis equina venezolana, encefalitis por arbovirus, Culex, Colombia
Resumen
Introducción. El foco enzoótico del subtipo ID del virus de la encefalitis equina venezolana en la región del Magdalena Medio produce esporádicamente casos en humanos. El registro de un caso en una niña de tres años en el caserío de Chingalé, municipio de Puerto Wilches, Santander, motivó este estudio.
Objetivo. Evaluar el caserío de Chingalé como probable sitio de infección.
Materiales y métodos. En junio de 2005 se recolectaron mosquitos con trampas de luz CDC dentro y fuera de las casas; también se colocaron trampas Trinidad y hámster centinela alrededor de las viviendas.
Resultados. En 107 muestreos se recolectaron 14.423 mosquitos distribuidos en 35 especies. La abundancia relativa de los posibles vectores del subtipo ID del virus de la encefalitis equina venezolana encontrados, Culex (Melanoconion) pedroi y Cx. (Mel) ocossa, en general, fue baja (<4%). Estas dos especies fueron más frecuentes en el exterior de las viviendas que en los dormitorios: Cx. ocossa en las trampas CDC y Cx. pedroi en las Trinidad. C. ocossa fue más frecuente en las viviendas. Además, este estudio detectó Psorophora confinis, considerado posible vector de subtipos epidemo/epizoóticos y una alta frecuencia de Mansonia indubitans en las viviendas. Los hámster expuestos no se infectaron.
Conclusiones. La niña pudo infectarse en su casa o cerca de ella, aunque el ciclo epidemiológico del virus no tiene lugar en el casco urbano de Chingalé. Posiblemente ocurre en un lugar cercano y Culex (Melanoconion) infectados llevan el virus al caserío, en donde algunos mosquitos incursionaron a alimentarse.
Descargas
Los datos de descargas todavía no están disponibles.
Referencias bibliográficas
1. Weaver SC, Ferro C, Barrera R, Boshell J, Navarro JC. Venezuelan equine encephalitis. Annu Rev Entomol. 2004;49:141-74.
2. Weaver S. Recurrent emergence of Venezuelan equine encephalomyelitis. In: Scheld WM, Hughes J, editors. Emerging infections I. Washington, D.C.: ASM Press; 1998. p. 27-42.
3. Groot H. The health and economic impact of Venezuelan equine encephalitis (VEE). En: Proceedings of the Workshop-Symposium on Venezuelan equine encephalitis virus. Sci Pub No. 243. Washington, D.C.: PAHO; 1972. p. 7-16.
4. Sudia WD. Arthropod vectors of epidemic Venezuelan equine encephalitis. En: Proceedings of the Workshop-Symposium on Venezuelan equine encephalitis Virus. Sci Pub No. 243. Washington, D.C.: PAHO; 1972. p. 157 69.
5. Weaver SC, Anishchenko M, Bowen R, Brault AC, Estrada-Franco JG, Fernandez Z, et al. Genetic determinants of Venezuelan equine encephalitis emergence. Arch Virol Suppl. 2004;18:43-64.
6. Jhonson KM, Shelokov A, Peralta PH, Dammin GJ, Young NA. Recovery of Venezuelan equine encephalomyelitis virus in Panama. A fatal case in man. Am J Trop Med Hyg. 1968;17:432-40.
7. Ferro C, Boshell J, Moncayo AC, González M, Ahumada ML, Kang W, et al. Natural enzootic vectors of Venezuelan equine encephalitis virus, Magdalena Valley, Colombia. Emerg Infect Dis. 2003;9:49-54.
8. Anishchenko M, Bowen RA, Paessler S, Austgen L, Greene IP, Weaver SC. Venezuelan encephalitis emergence mediated by a phylogenetically predicted viral mutation. Proc Natl Acad Sci USA. 2006;103:4994-9.
9. Brault AC, Powers AM, Holmes EC, Woelk CH, Weaver SC. Positively charged amino acid substitutions in the E2 envelope glycoprotein are associated with the emergence of Venezuelan equine encephalitis virus. J Virol. 2002;76:1718-30.
10. Oberste MS, Fraire M, Navarro R, Zepeda C, Zarate ML, Ludwig GV, et al. Association of Venezuelan equine encephalitis virus subtype IE with two equine epizootics in Mexico. Am J Trop Med Hyg. 1998;59:100-7.
11. Walton TE, Alvarez O Jr, Buckwalter RM, Johnson KM. Experimental infection of horses with enzootic and epizootic strains of Venezuelan equine encephalomyelitis virus. J Infect Dis. 1973;128:271-82.
12. Dickerman RW, Cupp EW, Groot H, Morales-Alarcón A, Cura E, Dickerman AW, et al. Actividad del virus de la encefalitis equina venezolana en el norte de Colombia, abril y mayo de 1983. Bol Of Sanit Panam. 1987;103:1-9.
13. Sanmartin C, Trapido H, Barreto P, Lesmes CI. Isolations of Venezuelan and Eastern Equine Encephalomyelitis viruses from sentinel hamsters exposed in the Pacific lowlands of Colombia. Am J Trop Med Hyg. 1971;20:469-73.
14. Groot H, Morales A, Romero M, Ferro C, Prías E, Vidales H, et al. Estudios de arbovirosis en Colombia en la década de 1970. Biomédica 1996;16:331-44.
15. Barrera R, Ferro C, Navarro JC, Freier J, Liria J, Salas R, et al. Contrasting sylvatic foci of Venezuelan equine encephalitis virus in Northern South America. Am J Trop Med Hyg. 2002;67:324-34.
16. Groot H, Morales A, Vidales H. Virus isolations from forest mosquitoes in San Vicente de Chucurí, Colombia. Am J Trop Med Hyg. 1961;10:397-402.
17. Mesa F, Cárdenas J, Villamil LC. Las encefalitis equinas en la salud pública. Bogotá: Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia, Universidad Nacional de Colombia; 2005.
18. Davies JB. A small mosquito trap for use with animal or carbon dioxide baits. Mosq News. 1971;31:441-3.
19. Lumsden WH. A trap for insects biting small vertebrates. Nature. 1958;181:819-20.
20. Service M. Mosquito ecology: Field sampling methods. 2nd ed. London: Chapman & Hall; 1993. p. 988.
21. Lane J. Neotropical Culicidae. Vol.1 y 2. Sao Paulo: University of Sao Paulo; 1953.
22. Cova-García P.Mosquitos de Venezuela. Tomos 1 y 2. Caracas: Ministerio de Sanidad y Asistencia Social; 1966.
23. Faran ME, Linthicum K. A handbook of the Amazonian species of Anopheles (Nyssorhynchus) (Diptera: Culicidae). Mosq Syst. 1981;13:1-81.
24. Sallum MA, Forattini OP. Revision of the Spissipes section of Culex (Melanoconion) (Diptera: Culicidae). J Am Mosq Control Assoc. 1996;12:517-600.
25. Pecor JE, Mallanpalli VI, Harbach RE, Peyton El. Catalog and illustrated review of the subgenus Melanoconion of Culex (Diptera: Culicidae). Contrib Am Entomol Inst. 1992;27:1-228
26. Bulla L. An index of evenness and its associated diversity measure. Oikos. 1994;70:167-71.
27. Morales A, Romero M, Olano VA, Calvache D. Demostración del virus de la encefalitis equina venezolana tipo enzoótico en la hemolinfa de mosquitos Psorophora confinnis infectados por vía oral. Biomédica. 1982;2:111-7.
28. Morales A, Romero M, Olano VA. Transmisión experimental del virus de la encefalitis equina venezolana subgrupo ID tipo enzoótico por Psorophora confinnis a ratones. Biomédica.1983;3:10-4.
29. Ortiz D, Aischenko M, Waver SC. Susceptibility of Psorophora confinnis (Diptera : Culicidae) to infection with epizootic (Subtype IC) and enzootic (Subtype ID) Venezuelan equine encephalitis viruses. J Med Entomol. 2005;42:857-63.
30. Turell MJ, Jones JW, Sardelis MR, Dohm DJ, Coleman RE, Watts DM, et al. Vector competence of Peruvian mosquitoes (Diptera:Culicidae) for epizootic and enzootic strains of Venezuelan equine encephalomyelitis virus. J Med Entomol. 2000;37:835-9.
31. Mendez W, Liria J, Navarro JC, Garcia, CZ, Freier JE, Salas R, et al. Spatial dispersion of adult mosquitoes (Diptera: Culicidae) in a sylvatic focus of Venezuelan equine encephalitis virus. J Med Entomol. 2001:38:813-21.
32. Galindo P, Grayson MA. Culex (Melanoconion) aikenii: natural vector in Panamá of endemic Venezuelan encephalitis. Science. 1971;172:594-5.
33. Bowen GS, Calisher CH. Virological and serological studies of Venezuelan equine encephalomyelitis in humans. J Clin Microbiol. 1976;4:22-7.
34. Weaver SC, Salas R, Rico-Hesse R, Ludwig GV, Oberste MS, Boshell J, et al. Re-emergence of epidemic Venezuelan equine encephalomyelitis in South America. VEE Study Group. Lancet. 1996;348:436-40.
35. Sanmartin-Barberi C, Groot H, Osorno-Mesa E. Human epidemic in Colombia caused by the Venezuelan equine encephalomyelitis virus. Am J Trop Med Hyg. 1954;3:283-93.
36. Forattini OP. Entomología médica. Vol. 3. Sao Paulo: Editora da Universidade de Sao Paulo; 1965. p. 416.
2. Weaver S. Recurrent emergence of Venezuelan equine encephalomyelitis. In: Scheld WM, Hughes J, editors. Emerging infections I. Washington, D.C.: ASM Press; 1998. p. 27-42.
3. Groot H. The health and economic impact of Venezuelan equine encephalitis (VEE). En: Proceedings of the Workshop-Symposium on Venezuelan equine encephalitis virus. Sci Pub No. 243. Washington, D.C.: PAHO; 1972. p. 7-16.
4. Sudia WD. Arthropod vectors of epidemic Venezuelan equine encephalitis. En: Proceedings of the Workshop-Symposium on Venezuelan equine encephalitis Virus. Sci Pub No. 243. Washington, D.C.: PAHO; 1972. p. 157 69.
5. Weaver SC, Anishchenko M, Bowen R, Brault AC, Estrada-Franco JG, Fernandez Z, et al. Genetic determinants of Venezuelan equine encephalitis emergence. Arch Virol Suppl. 2004;18:43-64.
6. Jhonson KM, Shelokov A, Peralta PH, Dammin GJ, Young NA. Recovery of Venezuelan equine encephalomyelitis virus in Panama. A fatal case in man. Am J Trop Med Hyg. 1968;17:432-40.
7. Ferro C, Boshell J, Moncayo AC, González M, Ahumada ML, Kang W, et al. Natural enzootic vectors of Venezuelan equine encephalitis virus, Magdalena Valley, Colombia. Emerg Infect Dis. 2003;9:49-54.
8. Anishchenko M, Bowen RA, Paessler S, Austgen L, Greene IP, Weaver SC. Venezuelan encephalitis emergence mediated by a phylogenetically predicted viral mutation. Proc Natl Acad Sci USA. 2006;103:4994-9.
9. Brault AC, Powers AM, Holmes EC, Woelk CH, Weaver SC. Positively charged amino acid substitutions in the E2 envelope glycoprotein are associated with the emergence of Venezuelan equine encephalitis virus. J Virol. 2002;76:1718-30.
10. Oberste MS, Fraire M, Navarro R, Zepeda C, Zarate ML, Ludwig GV, et al. Association of Venezuelan equine encephalitis virus subtype IE with two equine epizootics in Mexico. Am J Trop Med Hyg. 1998;59:100-7.
11. Walton TE, Alvarez O Jr, Buckwalter RM, Johnson KM. Experimental infection of horses with enzootic and epizootic strains of Venezuelan equine encephalomyelitis virus. J Infect Dis. 1973;128:271-82.
12. Dickerman RW, Cupp EW, Groot H, Morales-Alarcón A, Cura E, Dickerman AW, et al. Actividad del virus de la encefalitis equina venezolana en el norte de Colombia, abril y mayo de 1983. Bol Of Sanit Panam. 1987;103:1-9.
13. Sanmartin C, Trapido H, Barreto P, Lesmes CI. Isolations of Venezuelan and Eastern Equine Encephalomyelitis viruses from sentinel hamsters exposed in the Pacific lowlands of Colombia. Am J Trop Med Hyg. 1971;20:469-73.
14. Groot H, Morales A, Romero M, Ferro C, Prías E, Vidales H, et al. Estudios de arbovirosis en Colombia en la década de 1970. Biomédica 1996;16:331-44.
15. Barrera R, Ferro C, Navarro JC, Freier J, Liria J, Salas R, et al. Contrasting sylvatic foci of Venezuelan equine encephalitis virus in Northern South America. Am J Trop Med Hyg. 2002;67:324-34.
16. Groot H, Morales A, Vidales H. Virus isolations from forest mosquitoes in San Vicente de Chucurí, Colombia. Am J Trop Med Hyg. 1961;10:397-402.
17. Mesa F, Cárdenas J, Villamil LC. Las encefalitis equinas en la salud pública. Bogotá: Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia, Universidad Nacional de Colombia; 2005.
18. Davies JB. A small mosquito trap for use with animal or carbon dioxide baits. Mosq News. 1971;31:441-3.
19. Lumsden WH. A trap for insects biting small vertebrates. Nature. 1958;181:819-20.
20. Service M. Mosquito ecology: Field sampling methods. 2nd ed. London: Chapman & Hall; 1993. p. 988.
21. Lane J. Neotropical Culicidae. Vol.1 y 2. Sao Paulo: University of Sao Paulo; 1953.
22. Cova-García P.Mosquitos de Venezuela. Tomos 1 y 2. Caracas: Ministerio de Sanidad y Asistencia Social; 1966.
23. Faran ME, Linthicum K. A handbook of the Amazonian species of Anopheles (Nyssorhynchus) (Diptera: Culicidae). Mosq Syst. 1981;13:1-81.
24. Sallum MA, Forattini OP. Revision of the Spissipes section of Culex (Melanoconion) (Diptera: Culicidae). J Am Mosq Control Assoc. 1996;12:517-600.
25. Pecor JE, Mallanpalli VI, Harbach RE, Peyton El. Catalog and illustrated review of the subgenus Melanoconion of Culex (Diptera: Culicidae). Contrib Am Entomol Inst. 1992;27:1-228
26. Bulla L. An index of evenness and its associated diversity measure. Oikos. 1994;70:167-71.
27. Morales A, Romero M, Olano VA, Calvache D. Demostración del virus de la encefalitis equina venezolana tipo enzoótico en la hemolinfa de mosquitos Psorophora confinnis infectados por vía oral. Biomédica. 1982;2:111-7.
28. Morales A, Romero M, Olano VA. Transmisión experimental del virus de la encefalitis equina venezolana subgrupo ID tipo enzoótico por Psorophora confinnis a ratones. Biomédica.1983;3:10-4.
29. Ortiz D, Aischenko M, Waver SC. Susceptibility of Psorophora confinnis (Diptera : Culicidae) to infection with epizootic (Subtype IC) and enzootic (Subtype ID) Venezuelan equine encephalitis viruses. J Med Entomol. 2005;42:857-63.
30. Turell MJ, Jones JW, Sardelis MR, Dohm DJ, Coleman RE, Watts DM, et al. Vector competence of Peruvian mosquitoes (Diptera:Culicidae) for epizootic and enzootic strains of Venezuelan equine encephalomyelitis virus. J Med Entomol. 2000;37:835-9.
31. Mendez W, Liria J, Navarro JC, Garcia, CZ, Freier JE, Salas R, et al. Spatial dispersion of adult mosquitoes (Diptera: Culicidae) in a sylvatic focus of Venezuelan equine encephalitis virus. J Med Entomol. 2001:38:813-21.
32. Galindo P, Grayson MA. Culex (Melanoconion) aikenii: natural vector in Panamá of endemic Venezuelan encephalitis. Science. 1971;172:594-5.
33. Bowen GS, Calisher CH. Virological and serological studies of Venezuelan equine encephalomyelitis in humans. J Clin Microbiol. 1976;4:22-7.
34. Weaver SC, Salas R, Rico-Hesse R, Ludwig GV, Oberste MS, Boshell J, et al. Re-emergence of epidemic Venezuelan equine encephalomyelitis in South America. VEE Study Group. Lancet. 1996;348:436-40.
35. Sanmartin-Barberi C, Groot H, Osorno-Mesa E. Human epidemic in Colombia caused by the Venezuelan equine encephalomyelitis virus. Am J Trop Med Hyg. 1954;3:283-93.
36. Forattini OP. Entomología médica. Vol. 3. Sao Paulo: Editora da Universidade de Sao Paulo; 1965. p. 416.
Cómo citar
1.
Ferro MC, Olano VA, Ahumada M, Weaver S. Mosquitos (Diptera: Culicidae) en el caserío de Chingalé, Santander, donde se registró un caso humano de encefalitis equina venezolana. biomedica [Internet]. 1 de junio de 2008 [citado 16 de abril de 2024];28(2):234-4. Disponible en: https://revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/94
Algunos artículos similares:
- Elizabeth Borrero, Gabriel Carrasquilla, Neal Alexander, Descentralización y reforma: ¿cuál es su impacto sobre la incidencia de malaria en los municipios colombianos? , Biomédica: Vol. 32 (2012): Suplemento 1, Malaria
- Raúl Murillo, Ricardo Cendales, Carolina Wiesner, Marion Piñeros, Sandra Tovar, Efectividad de la citología cérvico-uterina para la detección temprana de cáncer de cuello uterino en el marco del sistema de salud de Colombia , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- Sandra Lorena Girón, Julio César Mateus, Fabián Méndez, Impacto de un botadero a cielo abierto en el desarrollo de síntomas respiratorios y en costos familiares de atención en salud de niños entre 1 y 5 años en Cali, Colombia , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- José Joaquín Carvajal, Ligia Inés Moncada, Mauricio Humberto Rodríguez, Ligia del Pilar Pérez, Víctor Alberto Olano, Caracterización preliminar de los sitios de cría de Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse, 1894) (Diptera: Culicidae) en el municipio de Leticia, Amazonas, Colombia , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- Andrés Páez, Gloria Rey, Carlos Agudelo, Alvaro Dulce, Edgar Parra, Hernando Díaz-Granados, Damaris Heredia, Luis Polo, Brote de rabia urbana transmitida por perros en el distrito de Santa Marta, Colombia, 2006-2008 , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- Patricia Escobar, Katherine Paola Luna, Indira Paola Hernández, César Mauricio Rueda, María Magdalena Zorro, Simon L. Croft, Susceptibilidad in vitro a hexadecilfosfocolina (miltefosina), nifurtimox y benznidazole de cepas de Trypanosoma cruzi aisladas en Santander, Colombia , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- Gustavo Pradilla, Julio César Mantilla, Reynaldo Badillo, Encefalitis rábica humana por mordedura de murciélago en un área urbana de Colombia , Biomédica: Vol. 29 Núm. 2 (2009)
- Mauricio Beltrán, María Cristina Navas, María Patricia Arbeláez, Jorge Donado, Sergio Jaramillo, Fernando De la Hoz, Cecilia Estrada, Lucía del Pilar Cortés, Amalia de Maldonado, Gloria Rey, Seroprevalencia de infección por virus de la hepatitis B y por virus de la inmunodeficiencia humana en una población de pacientes con múltiples transfusiones en cuatro hospitales, Colombia, Sur América , Biomédica: Vol. 29 Núm. 2 (2009)
- Rosa Magdalena Uscátegui, Adriana M. Correa, Jaime Carmona-Fonseca, Cambios en las concentraciones de retinol, hemoglobina y ferritina en niños palúdicos colombianos , Biomédica: Vol. 29 Núm. 2 (2009)
- Claudia M.E. Romero-Vivas, Luis Eduardo Castro, Lila Visbal, Ana María Santos, Esther Díaz, Miasis cutánea por Cochliomyia hominivorax (Coquerel) (Díptera: Calliphoridae) en el Hospital Universidad del Norte, Soledad, Atlántico , Biomédica: Vol. 29 Núm. 1 (2009)
Número
Sección
Artículos originales
| Estadísticas de artículo | |
|---|---|
| Vistas de resúmenes | |
| Vistas de PDF | |
| Descargas de PDF | |
| Vistas de HTML | |
| Otras vistas | |
