Evaluación de la técnica modificada de Dennis para el diagnóstico de fasciolosis bovina

  • Stefanya Correa Grupo de Microbiología Ambiental, Escuela de Microbiología, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia
  • Yudy Liceth Martínez Grupo de Microbiología Ambiental, Escuela de Microbiología, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia
  • Jessika Lissethe López Programa de Estudio y Control de Enfermedades Tropicales, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia
  • Luz Elena Velásquez Grupo de Microbiología Ambiental, Escuela de Microbiología, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia Programa de Estudio y Control de Enfermedades Tropicales, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia
Palabras clave: Fasciola hepatica, fascioliosis/diagnóstico, estudios de validación, enfermedades de los bóvidos, Colombia.

Resumen

Introducción. La fasciolosis bovina genera cuantiosas pérdidas económicas, que en Colombia se estiman en COP$12.483 millones anuales, y tiene una prevalencia de 25 % en vacunos lecheros. La enfermedad se diagnostica mediante pruebas parasitológicas. En el país se utiliza la técnica de Dennis modificada en el 2002, pero su sensibilidad, especificidad y validez se desconocen.
Objetivo. Evaluar la validez y el desempeño de la técnica modificada de Dennis para el diagnóstico de fasciolosis bovina, usando como prueba de referencia la observación de parásitos en el hígado.
Materiales y métodos. Se hizo un estudio de evaluación diagnóstica. Se seleccionaron por conveniencia bóvidos de descarte sacrificados entre marzo y junio de 2013 en Frigocolanta; de cada ejemplar se recolectaron 25 g de heces y se examinaron los conductos biliares y el hígado en busca de Fasciola hepatica. Se estimaron los valores de sensibilidad, especificidad, valor predictivo positivo, valor predictivo negativo e índice de validez, con intervalos de confianza de 95 %. Como prueba de referencia se usó la evaluación post mortem.
Resultados. Se analizaron 180 bóvidos. La sensibilidad y la especificidad de la técnica modificada de Dennis fueron de 73,2 % (IC95% 58,4-87,9) y 84,2 % (IC95% 77,7-90,6), respectivamente. El valor predictivo positivo fue de 57,7 % (IC95 % 43,3-72,1) y el negativo fue de 91,4 % (IC95% 86,2-96,6). La prevalencia de fasciolosis bovina fue de 22,8 % (IC95% 16,4-29,2).
Conclusión. La validez y el desempeño de la técnica modificada de Dennis fueron superiores a los de la técnica tradicional, por lo que constituye una buena heramienta de tamización para el diagnóstico de la fasciolosis en estudios poblacionales y de prevalencia, así como en jornadas de salud animal.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Referencias

Andrews SJ, Graczyk TK, Fried B, Fairweather I, Threadgold LT, Torgerson P, et al. Fasciolosis. En: Dalton JP, editor. Fasciolosis. Wallingford: United Kingdom: CAB International; 1998. p. 113-49.

Mas-Coma MS, Esteban JG, Bargues MD. Epidemiology of human fascioliasis: A review and proposed new classification. Bull World Health Organ. 1999;77:340-46.

Estrada VE, Gómez M, Velásquez LE. La higiene del ganado y la fasciolosis bovina, Medellín y Rionegro, 1914-1970. Iatreia. 2006;19:393-407.

González C, Sánchez G, Castro C, Gómez C, Molina F, Velásquez LE. Control de Fasciola hepatica en el agua de consumo animal a través de filtración rápida y lenta. Revista EIA. 2013;10:133-41.

Quintero D, Valencia G, Zuluaga M, Velásquez LE, Valencia N, Gómez C. Vereda La Madera de El Carmen de Viboral - Antioquia: distribución de focos de fasciolosis bovina. Colanta Pecuaria. 2013;40:39-45.

Wilches C, Jaramillo G, Muñoz L, Robledo SM, Vélez D. Presencia de infestación por Fasciola hepatica en habitantes de San Nicolás, Oriente antioqueño. Infectio. 2009;13:92-9.

Pulido AD, Castañeda R, Arbeláez G. Fasciola hepatica: pedagogía de diagnóstico por laboratorio y su situación en Colombia. REDVET. 2010;12:1-11.

Valencia N, Malone JB, Gómez C, Velásquez LE. Climate-based risk models for Fasciola hepatica in Colombia. Geospat Health. 2012;6:67-85. http://dx.doi.org/10.4081/gh.2012.125.

Ministerio de la Protección Social. Decreto 1500 mayo 4 de 2007. Fecha de consulta: 1#º de noviembre de 2013. Disponible en: https://www.invima.gov.co/images/stories/aliementos/Decreto1500_2007.pdf.

Gálvez AC, Duque F, Velásquez LE. La enfermedad es otra: itinerario terapéutico de la fasciolosis bovina en Rionegro (Antioquia). Ces Med Vet Zootec. 2012;7:74-87.

Álvarez A, Boyacá M. Comparación de la técnica de Dennis con los hallazgos hepáticos post mortem para el diagnóstico de la fasciolosis bovina. Cultura Científica. 2009;7:28-33.

Li O, Leguía G, Espino A, Duménigo B, Díaz A, Otero O. Detección de anticuerpos y antígenos para el diagnóstico de Fasciola hepatica en alpacas naturalmente infectadas. Rev Investig Vet Perú. 2005;16:143-53.

Uruburu M, Bedoya JC, Velásquez LE. ELISA indirecta para el diagnóstico de fasciolosis bovina en leche. Ces Med Vet Zootec. 2013;18:93-100.

Vargas D, Vega M, González CG. Aproximación a una caracterización molecular de Fasciola hepatica por la técnica RAPDs - PCR. Parasitol Latinoam. 2003;58:11-6. http://dx.doi.org/10.4067/S0717-77122003000100002.

Becerra WM. Consideraciones sobre estrategias sostenibles para el control de Fasciola hepatica en Latinoamérica. Rev Col Cienc Pec. 2001;14:30-5.

Winn WC, Allen D, Janda WM, Koneman EW, Procop GW, Schrenckenberger PC, et al. Koneman. Diagnóstico microbiológico. Sexta edición. Bogotá D.C: Editorial Médica Paramericana; 2008. p. 1199.

Pajuelo G, Luján D, Paredes B, Tello R. Aplicación de la técnica de sedimentación espontánea en tubo en el diagnóstico de parásitos intestinales. Rev Biomed. 2006;17:96-101.

Sandoval E, Morales G, Ybarra N, Barrios M, Borges J. Comparación entre dos modelos diferentes de cámaras de McMaster empleadas para el conteo coproscópico en el diagnóstico de infecciones por nematodos gastroentéricos en rumiantes. Zootecnia Trop. 2011;4:29.

Gabrie JA, Rueda MM, Canales M, Sánchez A. Utilidad del método Kato-Katz para diagnóstico de unciniariasis: experiencia en una zona rural. Rev Med Hondur. 2012; 80:96-101.

Aguirre DH, Viñabal AE, Gaido AB. Comparación de tres técnicas coproparasitológica para el diagnóstico de Fasciola hepatica en rumiantes. Vet. Arg. 1998;15:421-7.

Girao ES, Ueno H. Técnica de quatro tamises para o diagnóstico coprológico cuantitativo de fasciolose dos rumiantes. Pesq Agropec. 1985;20:905-12.

Dennis W, Stone W, Swanson L. A new laboratory and field diagnostic test for fluke ova in feces. Florida Agricultural Experiment Station Journal Series. 1954;172:47-50.

Valero AM, Pérez I, Periago MV, Khoubbane M, Mas-Coma S. Fluke egg characteristics for the diagnosis of human and animal fascioliasis by Fasciola hepatica and F. gigantica. Acta Trop. 2009;111:150-9. http://dx.doi.org/10.1016/j.actatropica.2009.04.005.

Castro N, Becerra M. Foco de fasciolisis ovina en una hacienda en la vereda Presidente, municipio de Chitagá, Norte de Santander, Colombia. Bistua. 2011;9:64-72.

López LP, Romero J, Velásquez LE. Aislamiento de Paramphistomidae en vacas de leche y en el hospedador intermediario (Lymnaea truncatula y Lymnaea columella) en una granja del trópico alto en el occidente de Colombia. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias. 2008;21:9-18.

Paucar S, Chávez A, Casas E, Suárez F. Prevalencia de fascioliasis y paramfistomiasis en el ganado lechero de Oxapampa, Pasco. Rev Investig Vet Perú. 2010;21:87-92.

Suárez H, Olaechea V, Rossanigo CE, Romero JR. Enfermedades parasitarias. Publ Tec. 2007;70:159-77.

Bedoya J, Hurtado Y, Pérez J, Solano S, Úsuga VM, Vanegas M, et al. Primer registro de focos de fasciolosis y paramfistomosis en bovinos doble propósito, Gómez Plata, Antioquia, Colombia. Hechos Microbiológicos. 2014;3:1-31.

López J, Velásquez LE. Cotylophoron panamensis (Digenea: Paramphistomidae) in cattle from Meta and Guaviare, Colombia. Acta Biol Colomb. 2012;17:421-30.

Uribe N, Sierra RF, Espinosa CT. Comparison of the technique Kato-Katz, TSET and TSR in diagnosis of the infection by Fasciola hepatica in humans. Salud UIS. 2012;44:7-12.

Publicado
2016-04-01
Cómo citar
Correa, S., Martínez, Y. L., López, J. L., & Velásquez, L. E. (2016). Evaluación de la técnica modificada de Dennis para el diagnóstico de fasciolosis bovina. Biomédica, 36(Sup1), 64-68. https://doi.org/10.7705/biomedica.v36i2.2875
Sección
Artículos originales