Evaluación del efecto tóxico de la doramectina, la ivermectina y la eprinomectina sobre Triatoma infestans en un modelo de rata
Resumen
Introducción. La principal herramienta para el control de los triatominos, vectores de Trypanosoma cruzi, ha sido el uso masivo e intensivo de piretroides. La aparición de resistencia a estas moléculas ha planteado la necesidad de encontrar estrategias nuevas, alternativas y complementarias de control.
Objetivo. Evaluar el efecto tóxico de la ivermectina, la doramectina y la eprinomectina sobre Triatoma infestans y sus consecuencias en la alimentación con sangre en un modelo de roedor.
Materiales y métodos. Se alimentaron ninfas de quinto estadio de T. infestans en distintos momentos sobre ratas Wistar tratadas previamente con doramectina, ivermectina, eprinomectina o dimetilsulfóxido (excipiente de control), administrados tópicamente o por vía oral. Se determinó el efecto de cada endectocida y del dimeltilsulfóxido en la cantidad de sangre ingerida, el volumen de excreciones y el porcentaje de mortalidad.
Resultados. Únicamente la mortalidad de los insectos dependió del endectocida suministrado a las ratas y de la vía de administración utilizada. La doramectina causó mayor mortalidad (21,5 %) comparada con la ivermectina, la eprinomectina y el dimetilsulfóxido (16, 11 y 2,5 %, respectivamente), y la administración tópica fue más efectiva que la vía oral (23 Vs. 9,3 %).
Conclusión. Los resultados obtenidos demuestran el efecto tóxico de los tres endectocidas en T. infestans. Su utilización en animales domiciliarios o que viven en el eridomicilio podría ser una interesante estrategia complementaria de la aspersión con piretroides para el control de T. infestans.
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Referencias bibliográficas
Coura JR, Días, JC. Epidemiology, control and surveillance of Chagas disease: 100 years after its discovery. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2009;104(Suppl.1):31-40. https://doi.org/10.1590/S0074-02762009000900006
Ventura-García L, Roura M, Pell C, Posada E, Gascón J, Aldasoro E, et al. Socio-cultural aspects of Chagas disease: A systematic review of qualitative research. PLoSNegl Trop Dis. 2013;12:7:e2410. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0002410
Toso AM, Vial FU, Galanti N. Transmisión de la enfermedad de Chagas por vía oral. Rev Med Chile. 2011;139:258-66. https://doi.org/10.4067/S0034-98872011000200017
World Health Organization. Sustaining the drive to overcome the global impact of neglected tropical diseases: Second Who Report on Neglected Diseases. Geneva: WHO; 2013.
Salvatella R, Schofield J. Enfermedad de Chagas iniciativas para su control en Latinoamérica. Biomedicina. 2006;1:36-46.
Guarneri AA, Diotaiuti L, Gontijo NF, Gontijo AF, Pereira MH. Comparison of feeding behaviour of Triatoma infestans, Triatoma brasiliensis and Triatoma pseudomaculata in different hosts by electronic monitoring of the cibarial pump. J Insect Physiol. 2000;46:1121-7. https://doi.org/10.1016/S0022-1910(99)00222-X
Casabé N, Melgar F, Wood EJ, Zerba EN. Insecticidal activity of pyrethroids against Triatoma infestans. Int J Trop Insect Sci. 1988;9:233-36. https://doi.org/10.1017/S1742758400006044
World Health Organization. Chagas disease, interruption of transmission in Uruguay. Wkly Epidemiol Rec.1998;73:1-4.
World Health Organization. Chagas disease, interruption of transmission in Chile. Wkly Epidemiol Rec. 1999;2:9-11.
Gürtler RE, Cohen JE, Cecere MC, Lauricella MA, Chuit R, Segura EL. Influence of human and domestic animals on the household prevalence of Trypanosoma cruzi in Triatoma infestans populations in northwest Argentina. Am J Trop Med Hyg. 1998;58:748-58.
Mougabure-Cueto G, Picollo MI. Insecticide resistance in vector Chagas disease: Evolution, mechanisms and management. Acta Trop. 2015;149:70-85. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2015.05.014
Loza-Murguía M, Noireau F. Vectorial capacity of Triatoma guayasana (Wygodzinsky & Abalos) (Hemiptera: Reduviidae) compared with two other species of epidemic importance. Neotrop Entomol. 2010;39:799-809. https://doi.org/10.1590/S1519-566X2010000500020
Dadé MM, Daniele MR, Silvestrini MP, Mestorino N. Eficacia in vitro de tres endectocidas frente a Triatoma infestans. Rev Cubana Med Trop. 2014;66:338-50.
Parri HR, Djamgoz MB, Holdendyel L, Walker RJ. An ionsensitive microelectrode study on the effect of a high concentration of ivermectin on chloride balance in the somatic muscle bag cells of Ascaris suum. Parasitology. 1993;106:421-7. https://doi.org/10.1017/S0031182000067172
Errecalde J, Mestorino N. Terapéutica de las ectoparasitosis. En: Fiel C, Nari A, editores. Enfermedades parasitarias de importancia clínica y productiva en rumiantes. Fundamentos epidemiológicos para su diagnóstico y control. Montevideo: Editorial Hemisferio Sur; 2013. p. 625-30.
Soderlund DM. Pyrethroids, knockdown resistance and sodium channels. Pest Manag Sci. 2008;64:610-16. https://doi.org/10.1002/ps.1574
Wilson ML. Avermectins in arthropod vector management-prospects and pitfalls. Parasitol Today. 1993;9:83-7. https://doi.org/10.1016/0169-4758(93)90210-7
Pinto J, Cáceres AG, Vega S, Martínez R, Náquira C. Fuentes de alimentación de Panstrongylus herreri (Hemiptera: Triatominae) capturados en Utcubamba, Amazonas-Perú. Rev Peru Med Exp Salud Pública. 2008;25:179-84.
Calderón-Arguedas O, Chinchilla M, García F, Vargas M. Preferencias alimentarias de Triatoma dimidiata (Hemiptera: Reduvíidae) procedente de la meseta central de Costa Rica a finales del siglo XX. Parasitol Día. 2001;25:3-4. https://doi.org/10.4067/S0716-07202001000300002
Schweigmann NJ, Alberti A, Pietrokovsky S, Conti O, Riarte A, Montoya S, et al. A new host of Trypanosoma cruzi from Jujuy, Argentina: Octodontomys gliroides (Gervais & D’Orbigny, 1844) (Rodentia, Octodontidae). Mem Inst Oswaldo Cruz. 1992;87:217-20. https://doi.org/10.1590/S0074-02761992000200008
Institute for Laboratory Animal Research. Guide for the care and use of laboratory animals. Eighth edition. Washington, D.C: The National Academies Press; 2011. p. 248.
Dadé M, Daniele M, Silvestrini M, Marín G, Mestorino N. Ivermectin efficacy against T. infestans in vivo using hen model. J Pharm Pharmacol. 2014;2:353-8.
Rubio C, Moncada LI, Rojas MA, García A. Comportamiento de Rhodnius robustus Larousse, 1927 (Hemiptera, Reduviidae) durante su alimentación en condiciones de laboratorio. Biomédica. 2013;33:205-13. https://doi.org/10.7705/biomedica.v33i2.743
Zeng Z, Andrew NW, Woda JM, Halley BA, Crouch LS, Wang RW. Role of cytochrome P450 isoforms in the metabolism of abamectin and ivermectin in rats. J Agr Food Chem. 1996;44:3374-8. https://doi.org/10.1021/jf960222
Zeng Z, Andrew NW, Green-Erwin ML, Halley BA. Fate of 40-epi-amino-40-deoxyavermectin B1. Drug Metab Disp. 1996;24:572-8.
Zeng Z, Andrew NW. Characterization of eprinomectin N-deacetylase in rats. Drug Metab Dispos. 1999;27:269-73.
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- Ernesto Pérez-Sánchez, Raúl Montiel-Cruz, Eréndira Romero-Domínguez, Griselda Pascacio-Bermúdez, Arturo Báez-Hernández, Guadalupe Díaz del Castillo-Flores, Fabián Correa-Morales, Gonzalo Vázquez-Prokopec, Pablo Manrique-Saide, Azael Che-Mendoza, Gabriela Meneses-Ruiz , Irma López-Martínez, María Jesús Sánchez, Seroprevalencia de Trypanosoma cruzi en niños de Veracruz, México: línea epidemiológica de base para un modelo de control fundamentado de la transmisión activa de la enfermedad de Chagas , Biomédica: Vol. 44 Núm. 1 (2024)
- Óscar Quirós-Gómez, Nicolás Jaramillo, Víctor Angulo, Gabriel Parra-Henao, Triatoma dimidiata en Colombia; distribución, ecología e importancia epidemiológica , Biomédica: Vol. 37 Núm. 2 (2017)
- Zinnia J. Molina-Garza, Roberto Mercado-Hernández, Daniel P. Molina-Garza, Lucio Galaviz-Silva, Triatoma gerstaeckeri (Hemiptera: Reduviidae) infectada con Trypanosoma cruzi en Nuevo León, México, y capacidad patógena de la cepa regional , Biomédica: Vol. 35 Núm. 3 (2015)
- Patricia Escobar, Katherine Paola Luna, Indira Paola Hernández, César Mauricio Rueda, María Magdalena Zorro, Simon L. Croft, Susceptibilidad in vitro a hexadecilfosfocolina (miltefosina), nifurtimox y benznidazole de cepas de Trypanosoma cruzi aisladas en Santander, Colombia , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- María Clara Echeverry, Nubia Catalina Tovar, Guillermo Mora, Presencia de anticuerpos contra neurorreceptores cardiacos de acetilcolina muscarínicos tipo II en pacientes con enfermedad de Chagas e implantación de marcapasos , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- Marlene Reyes, Víctor Manuel Angulo, Ciclo de vida de Triatoma dimidiata Latreille, 1811 (Hemiptera, Reduviidae) en condiciones de laboratorio: producción de ninfas para ensayos biológicos , Biomédica: Vol. 29 Núm. 1 (2009)
- Concepción Judith Puerta, Johana María Guevara, Paula Ximena Pavía, Marleny Montilla, Rubén Santiago Nicholls, Edgar Parra, Yuli Katherine Barrera, Evaluación de las pruebas de PCR TcH2AF-R y S35-S36 para la detección de Trypanosoma cruzi en tejido cardiaco de ratón , Biomédica: Vol. 28 Núm. 4 (2008)
- Olga Serrano, Florencio Mendoza, Benny Suárez, Ana Soto, Seroepidemiología de la enfermedad de Chagas en dos localidades del municipio Costa de Oro, estado Aragua, Venezuela , Biomédica: Vol. 28 Núm. 1 (2008)
- Guillermo Mora, María Clara Echeverry, Gustavo Enrique Rey, Myriam Consuelo López, Luisa Fernanda Posada, Fabio Aurelio Rivas, Frecuencia de anticuerpos anti Trypanozoma cruzi en pacientes portadores de marcapasos de la Clinica San Pedro Claver de Bogotá , Biomédica: Vol. 27 Núm. 4 (2007)
- Keila Torres, Francys Avendaño-Rangel, Eliécer Lizano, María Rojas, Claudina Rodríguez-Bonfante, Rafael Bonfante-Cabarcas, Elis Aldana, Evaluación de la estructura espacial de Triatoma maculata del centro-occidente de Venezuela y su viabilidad alimentado con sangre humana en condiciones de laboratorio , Biomédica: Vol. 30 Núm. 1 (2010)
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