Acción insecticida de análogos sintéticos de girgensohnina y de aceites esenciales sobre Rhodnius prolixus (Hemiptera: Reduviidae)

Juliana Cuadros, Aurora L. Carreño, Vladimir V. Kouznetsov, Jonny E. Duque, .

Palabras clave: Triatominae, enfermedad de Chagas, insecticidas, aceites volátiles

Resumen

Introducción. El alcaloide natural girgensohnina se ha usado como modelo en la síntesis de nuevos análogos de alcaloidales alfa-aminonitrílicos con efecto insecticida en vectores de enfermedades.
Objetivo. Evaluar la actividad biocida de análogos de girgensohnina y de aceites esenciales de las plantas Cymbopogon flexuosus, Citrus sinensis y Eucalyptus citriodora en ninfas de estadios I y V de Rhodnius prolixus.
Materiales y métodos. Se empleó la aplicación tópica en terguitos, esternitos y superficies tratadas con diferentes dosis exploratorias de cada una de las moléculas y aceites esenciales para determinar las dosis letales (LD50 y LD95).
Resultados. El análogo 3 tuvo la mayor actividad insecticida, con una mortalidad de 83,3±16,7% en los terguitos, de 38,9±4,8 % en los esternitos y de 16,7±0 % a las 72 horas en ninfas de estadio I expuestas a superficies tratadas y 500 mg.L-1. En las ninfas de estadio V solo se presentó mortalidad en los esternitos (11,1±9,6 % con el análogo 6 y 5,5±4,7 % con los análogos 3 y 7 a las 72 h y 1.500 mg.L-1). Las dosis letales para la molécula 3 en los terguitos de ninfas de estadio I fueron las siguientes: DL50, 225,60 mg.L-1y DL95, 955,90 mg.L-1. En cuanto a los aceites esenciales, el efecto insecticida solo se presentó con C. flexuosus (11,1±4,8%) en los esternitos de ninfas de estadio I expuestas a superficies tratadas; con C. sinensis (5,6±4,8%) en los terguitos y en los esternitos (8,3±0%) a las 72 horas y 1.000 mg.L-1.
Conclusión. Los análogos sintéticos del alcaloide girgensohnina y los aceites esenciales de C. flexuosus y C. sinensis exhibieron actividad insecticida en R. prolixus. El análogo 3 exhibió la mayor actividad insecticida de todas las moléculas evaluadas bajo las condiciones de laboratorio.

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  • Juliana Cuadros Centro de Investigaciones en Enfermedades Tropicales, CINTROP, Departamento de Ciencias Básicas, Facultad de Medicina, Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga, Colombia
  • Aurora L. Carreño Centro de Investigaciones en Enfermedades Tropicales, CINTROP, Departamento de Ciencias Básicas, Facultad de Medicina, Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga, Colombia Laboratorio de Química Orgánica y Biomolecular, LQOBio, Departamento de Ciencias, Escuela de Química, Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga, Colombia
  • Vladimir V. Kouznetsov Laboratorio de Química Orgánica y Biomolecular, LQOBio, Departamento de Ciencias, Escuela de Química, Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga, Colombia
  • Jonny E. Duque Centro de Investigaciones en Enfermedades Tropicales, CINTROP, Departamento de Ciencias Básicas, Facultad de Medicina, Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga, Colombia http://orcid.org/0000-0003-2245-0558

Referencias bibliográficas

Justi AS, Russo CA, Mallet JR, Obara MT, Galvão C. Molecular phylogeny of Triatomini (Hemiptera:Reduviidae:Triatominae). Parasit Vectors. 2014;7:149. https://doi.org/10.1186/1756-3305-7-149

Mougabure-Cueto G, Picollo MI. Insecticide resistance in vector Chagas disease: Evolution, mechanisms and management. Acta Trop. 2015;149:70-85. https://doi.org/10. 1016/j.actatropica

Roca-Saumell C, Soriano-Arandes A, Solona-Díaz L, Gascón-Brustenga J, Grupo Concenso Chagas APS. Documento de consenso sobre el abordaje de la enfer-medad de Chagas en atención primaria de salud de áreas no endémicas. Aten Primaria. 2015;47:308-17. https://doi.org/10.1016/j.aprim.2015.01.002

World Health Organization. Chagas disease (American Trypanosomiasis). Accessed: March 18, 2016. Available from: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs340/en/#

Carabarin-Lima A, González-Vázquez MC, Rodríguez-Morales O, Baylón-Pacheco L, Rosales-Encina JL, Reyes-López PA, et al. Chagas disease (American trypanosomiasis) in México: An update. Acta Trop. 2013;127:126-35. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2013.04.007

Justi SA, Galvão C. The evolutionary origin of diversity in Chagas disease vectors. Trends Parasitol. 2017;33:42-52. https://doi.org/10.1016/j.pt.2016.11.002

Dujardin JP, Schofield CJ, Panzera F. Los vectores de la enfermedad de Chagas. Brussel: Koninklijke Academie Voor Overzeese Wetenschappen; 2002. p. 189.

Salazar-Schettino M, Rojas-Wastavino G, Bucio-Torres M, Martínez-Ibarra J, Monroy-Escobar M, Vences-Blanco M, et al. Revisión de 13 especies de la familia Triatominae (Hemiptera:Reduviidae) vectores de la enfermedad de Chagas en México. Journal of the Selva Andina Research Society. 2010;1:57-80.

Palmezano JM, Plazas LK, Rivera KE, Rueda VP. Enfermedad de Chagas: realidad de una patología frecuente en Santander, Colombia. Rev Médica UIS. 2015;28:81-90.

Instituto Nacional de Salud. Protocolo de Vigilancia en Salud Pública: Chagas. Accessed: August 29, 2015. Available from: http://www.ins.gov.co/lineas-de-accion/Subdireccion-Vigilancia/sivigila/Protocolos%20SIVIGILA/PRO%20Chagas.pdf.

Guhl F. Enfermedad de Chagas: realidad y perspectivas. Rev Biomed. 2009;20:228-34.

Maestre-Serrano R, Eyes-Escalante M. Actualización de la presencia y distribución de triatominos en el departamento del Atlántico-Colombia: 2003-2010. Bol Mal Salud Amb. 2012;52:125-8.

Parra-Henao GJ, Martínez MF, Angulo-Silva VM. Vigilancia de Triatominae (Hemiptera: Reduviidae) en Colombia. Bogotá: Colciencias-Red Chagas; 2013. p. 127.

Sfara V, Zerba EN, Alzogaray RA. Fumigant insecticidal activity and repellent effect of five essential oils and seven monoterpenes on first-instar nymphs of Rhodnius prolixus. J Med Entomol. 2009;46:511-5. http://www.bioone.org/doi/full/10.1603/033.046.0315

Moretti AN, Zerba EN, Alzogaray RA. Behavioral and toxicological responses of Rhodnius prolixus and Triatoma infestans (Hemiptera: Reduviidae) to 10 monoterpene alcohols. J Med Entomol. 2013;50:1046-54. https://doi.org/10.1603/ME12248

Carreño-Otero AL, Vargas-Méndez LY, Duque-Luna JE, Kouznetsov VV. Design, synthesis, acetylcholinesterase inhibition and larvicidal activity of girgensohnine analogues on Aedes aegypti, vector of dengue fever. Eur J Med Chem. 2014;78:392-400. https://doi.org/10.1016/j.ejmech. 2014.03.067

Vera SS, Zambrano DF, Méndez-Sánchez SC, Rodríguez-Sanabria F, Stashenko EE, Duque-Luna JE. Essential oils with insecticidal activity against larvae of Aedes aegypti (Diptera: Culicidae). Parasitol Res. 2014;113:2647-54. https://doi.org/10.1007/s00436-014-3917-6

Stashenko EE, Jaramillo BE, Martínez JR. Comparison of different extraction methods for the analysis of volatile secondary metabolites of Lippia alba (Mill.) N.E. Brown, grown in Colombia, and evaluation of its in vitro antioxidant activity. J Chromatogr A. 2004;1025:93-103. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2003.10.058

Centro de Investigaciones de Plagas e Insecticidas. Monitoreo de la resistencia a insecticidas en Triatominos en América Latina. Anexo II: Protocolo de evalución efecto insecticida de Rhodnius prolixus. Accessed: March 17, 2017. Available from: https://www.mundosano.org/download/bibliografia/Monografia%201.pdf.

Robertson JL, Savin NE, Russell RM, Preisler HK. Bioassays with arthropods. Second edition. Boca Ratón: CRC Press; 2007. p. 224.

Finney DJ. Probit Analysis. 3rd edition. New York: Cambridge University Press; 1971. p. 333.

Raymond M. Présentation d’un programme d’analyse log-probit pour micro-ordinateur. Cah ORSTOM Ser Entomol Med Parasitol. 1985;23:117-21.

Germano MD. Herencia y efectos demográficos de la resis-tencia a deltametrina en Triatoma infestans.Tesis. Buenos Aires: Universidad de Buenos Aires; 2012. Accessed: August 24, 2015. Available from: http://digital.bl.fcen.uba.ar/Download/Tesis/Tesis_5316_Germano.pdf.

Hadaway AB. Some factors affecting the distribution of rate of action of insecticides. Bull World Heal Organ. 1971; 44:221-4.

Juárez MP, Fernández GC. Cuticular hydrocarbons of triatomines. Comp Biochem Physiol Part A, Mol Integr Physiol. 2007;147:711-30. https://doi.org/10.1016/j.cbpa. 2006. 08.031

Zerba EN, de Licastro SA, Wood EJ, Picollo-de Villar MI. Modo de accion de insecticida en T. infestans. En: Carcavallo T, Rabinovich JE, Tonn RJ, editores. Factores biológicos y ecológicos en la enfermedad de Chagas. Tomo II. Párasitos-Reservorios-Control-Situación regional. Buenos Aires: OPS, OMS, Ministerio de Salud y Acción Social de la República de Argentina; 1985. p. 310-8.

Moretti AN. Efectos letales y subletales de monoterpenos sobre vectores de Chagas y su posible uso como herramientas de control. Tesis. Buenos Aires: Universidad de Buenos Aires; 2015. Accessed: March 20, 2017. Available from: http://digital.bl.fcen.uba.ar/Download/Tesis/Tesis_5773_Moretti.pdf.

Alzogaray RA. Caracterización de la tocixidad de insecti-cidas piretroides en Triatoma infestans (Klug). Tesis. Buenos Aires: Universidad de Buenos Aires; 1996. Accessed: September 12, 2015. Available from: http://digital.bl.fcen.uba.ar/Download/Tesis/Tesis_2815_Alzogaray.pdf.

Busvine JR. A critical review of the techniques for testing insecticides. London; Imprint unknown; 1971. p. 345.

Reyes M, Angulo VM, Sandoval CM. Efecto tóxico de β- cipermetrina, deltametrina y fenitrotión en cepas de Triatoma dimidiata (Latreille, 1811) y Triatoma maculata (Erichson, 1848) (Hemiptera, Reduviidae). Biomédica. 2007;27(Supl.1): 75-82. https://doi.org/10.7705/biomedica.v27i1.250

Cáceres L, Rovira JR, Calzada J, Saldaña A. Evaluación de la actividad tóxica de los insecticidas piretroides deltametrina y lambdacihalotrina en dos poblaciones de campo de Rhodnius pallescens (Hemiptera: Reduviidae) de Panamá. Biomédica. 2011;31:8-14. https://doi.org/10.7705/biomedica.v31i1.330

Sugiura M, Horibe Y, Kawada H, Takagi M. Insect spiracle as the main penetration route of pyrethroids. Pestic Biochem Physiol. 2008;91:135-40.

Sandoval CM. Monitoreo de la resistencia a insecticidas en triatominos en América Latina. Actividad insecticida del malatión y la deltametrina en una cepa colombiana de Rhodnius prolixus (Hemimptera: Reduviidae). Accessed: August 10, 2015. Available from: https://www.mundosano.org/download/bibliografia/Monografia%201.pdf.

Rojas-de Arias A, Lehane MJ, Schofield CJ, Fournet A. Comparative evaluation of pyrethroid insecticide formulations against Triatoma infestans (Klug): Residual efficacy on four substrates. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2003;98:975-80. https://doi.org/10.1590/S0074-02762003000700020

Palomino M, Villaseca P, Cárdenas F, Ancca J, Pinto M. Eficacia y residualidad de dos insecticidas piretroides contra Triatoma infestans en tres tipos de viviendas. Evaluación de campo en Arequipa, Perú. Rev Peru Med Exp Salud Pública. 2008;25:9-16.

Stampini M, Girgenti P, Locatelli DP. Activity of deltamethrin on different surfaces against Plodia interpunctella larvae (Lepidoptera: Pyralidae). Accessed: August 10, 2015. Available from: http://www.icup.org.uk/reports/icup884.pdf.

Vivas AS, Fernández DM. Toxicidad de cinco insecticidas en una cepa de laboratorio de Rhodnius prolixus Stål, 1859 (Hemiptera: Reduviidae) de Venezuela. Entomotropica. 2001;16:187-90.

Fournet A, Rojas-de Arias A, Charles B, Bruneton J. Chemical constituents of essential oils of muña, Bolivian plants traditionally used as pesticides, and their insecticidal properties against Chagas’ disease vectors. J Ethnopharmacol. 1996;52:145-9.

Hincapié-Llanos CA, Lopera-Arango D, Ceballos-Giraldo M. Actividad insecticida de extractos de semilla Annona miricata (Anonaceae) sobre Sitophilus zeamais (Coleoptera:Curculionidae). Rev Colomb Entomol. 2008;34: 76-82.

Ringuelet JA, Ocampo R, Henning C, Urrutia MI. Actividad insecticida del aceite esencial de Lippia alba (Mill.) N. E. Brown sobre Tribolium castaneum Herbst. en granos de trigo (Triticum aestivum L.). Rev Bras Agroecol. 2014;9: 214-22.

Lutz A, Sfara V, Alzogaray RA. Repellence produced by monoterpenes on Rhodnius prolixus (Hemiptera:Reduviidae) decreases after continuous exposure to these compounds. J Insect Sci. 2014;14:254. https://doi.org/10.1093/jisesa/ieu116

Zamora D, Klotz EA, Meister EA, Schmidt JO. Repellency of the components of the essential oil, Citronella, to Triatoma rubida, Triatoma protracta, and Triatoma recurva (Hemiptera: Reduviidae: Triatominae). J Med Entomol. 2015;52:719-21. https://doi.org/10.1093/jme/tjv03

Cómo citar
1.
Cuadros J, Carreño AL, Kouznetsov VV, Duque JE. Acción insecticida de análogos sintéticos de girgensohnina y de aceites esenciales sobre Rhodnius prolixus (Hemiptera: Reduviidae). biomedica [Internet]. 29 de marzo de 2017 [citado 28 de marzo de 2024];37(Sup. 2):50-8. Disponible en: https://revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/3379

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2017-03-29

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