Presencia de Aedes (Stegomyia) aegypti (Linnaeus, 1762) y su infección natural con el virus del dengue en alturas no registradas para Colombia
Resumen
Introducción. Aedes aegypti es el principal vector de fiebre amarilla urbana, dengue, chikungunya y zika. Se ha demostrado que la distribución biogeográfica de esta especie se ha expandido debido al calentamiento global y a factores socioeconómicos y culturales. Los cambios en los patrones de la distribución altitudinal de este vector y su infección con el virus son prioridades de la investigación encaminada a desarrollar estrategias de vigilancia entomológica y virológica en salud pública.
Objetivo. Evaluar la presencia de A. aegypti y su infección natural por el virus del dengue en alturas superiores a los 1.800 msnm en dos municipios periféricos del Valle de Aburrá, Antioquia, Colombia.
Materiales y métodos. Se instalaron 21 ovitrampas en los municipios de Bello y San Pedro de los Milagros, en un rango altitudinal de 1.882 a 2.659 msnm. Los adultos que emergieron de las ovitrampas se evaluaron con reacción en cadena de la polimerasa en tiempo real (RT-PCR) para la detección del virus del dengue.
Resultados. Se recolectaron 367 adultos de A. aegypti, siete de los cuales se encontraron a una altitud de 2.302 msnm en Tierradentro, Bello. Se detectaron 12 especímenes de A. aegypti positivos para dengue serotipo 2 en el barrio París de Bello, a 1.984 msnm.
Conclusión. Por primera vez se registró A. aegypti a 2.302 msnm, la mayor altitud registrada para este vector en Colombia. De igual forma, se encontró infección con el virus del dengue a 1.984 msnm. Estos hallazgos son significativos, ya que determinan regiones de Colombia con riesgo potencial de transmisión autóctona de dengue y otros arbovirus por A. aegypti.
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Referencias bibliográficas
Baneth G. Tick-borne infections of animals and humans: A common ground. Int J Parasitol. 2014;44:591-6. http://dx.doi.org/10.1016/j.ijpara.2014.03.011
Jongejan F, Uilenberg G. The global importance of ticks. Parasitology. 2004;123:S3-14.
Moraes-Filho J, Krawczak F, Costa FB, Soares JF, Labruna MB. Comparative evaluation of the vector competence of four South American populations of the Rhipicephalus sanguineus group for the bacterium Ehrlichia canis , the agent of canine monocytic ehrlichiosis. PLoS One. 2015;10:e0139386. http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0139386
Cicuttin G, Tarragona EL, De Salvo MN, Mangold A, Nava S. Infection with Ehrlichia canis and Anaplasma platys (Rickettsiales: Anaplasmataceae) in two lineages of Rhipicephalus sanguineus sensu lato (Acari: Ixodidae) from Argentina. Ticks Tick Borne Dis. 2015;6:724-9. http://dx.doi.org/10.1016/j.ttbdis.2015.06.006
Demma L, Traeger M, Nicholson W, Paddock C, Blau D, Eremeeva M, et al . Rocky Mountain spotted fever from an unexpected tick vector in Arizona. N Eng J Med. 2005;353:587-94. http://dx.doi.org/10.1056/NEJMoa050043
Szabó MPJ, Mangold AJ, João CF, Bechara GH, Guglielmone AA. Biological and DNA evidence of two dissimilar populations of the Rhipicephalus sanguineus tick group (Acari: Ixodidae) in South America. Vet Parasitol. 2005;130:131-40.
Moraes-Filho J, Marcili A, Nieri-Bastos FA, Richtzenhain LJ, Labruna MB. Genetic analysis of ticks belonging to the Rhipicephalus sanguineus group in Latin America. Acta Trop. 2011;117:51-5. http://dx.doi.org/10.1016/j.actatropica.2010.09.006
Nava S, Mastropaolo M, Venzal JM, Mangold AJ, Guglielmone AA. Mitochondrial DNA analysis of Rhipicephalus sanguineus sensu lato (Acari: Ixodidae) in the Southern Cone of South America. Vet Parasitol. 2012;190:547-55. http://dx.doi.org/10.1016/j.vetpar.2012.06.032
Venzal JM, Estrada-Peña A, Mangold AJ, González-Acuña D, Guglielmone AA. The Ornithodoros (Alectorobius) talaje species group (Acari: Ixodida: Argasidae): Description of Ornithodoros ( Alectorobius ) rioplatensis n. sp. from southern South America. J Med Entomol. 2008;45:832-40. http://dx.doi.org/10.1093/jmedent/45.5.832
Beati L, Nava S, Burkman EJ, Barros-Battesti DM, Labruna MB, Guglielmone AA, et al . Amblyomma cajennense (Fabricius, 1787) (Acari: Ixodidae), the Cayenne tick: Phylogeography and evidence for allopatric speciation. BMC Evol Biol. 2013;13:267. http://dx.doi.org/10.1186/1471-2148-13-267
Nava S, Beati L, Labruna MB, Cáceres AG, Mangold AJ, Guglielmone AA. Reassessment of the taxonomic status of Amblyomma cajennense with the description of three new species, Amblyomma tonelliae n. sp., Amblyomma interandinum n. sp. and Amblyomma patinoi n. sp., and reinstatement of Amblyomma mixtum , and Amblyomma sculptum . Ticks Tick Borne Dis. 2014;5:252-76. http://dx.doi.org/10.1016/j.ttbdis.2013.11.004
Trout RT, Steelman CD, Szalanski AL. Population genetics of Amblyomma americanum (Acari: Ixodidae) collected from Arkansas. J Med Entomol. 2010;47:152-61. http://dx.doi.org/10.1093/jmedent/47.2.152
Beati L, Patel J, Lucas-Williams H, Adakal H, Kanduma EG, Tembo-Mwase E, et al . Phylogeography and demographic history of Amblyomma variegatum (Fabricius) (Acari: Ixodidae), the tropical bont tick. Vector Borne Zoonotic Dis. 2012;12:514-25. http://dx.doi.org/10.1089/vbz.2011.0859
Radulovi c Ž, Milutinovi c M, Tomanovi c S, Mulenga A. Exon variability of gene encoding glycerol-3-phosphate dehydrogenase of Ixodes ricinus ticks. Parasite. 2010; 17:363-8.
Marrelli MT, Souza LF, Marques RC, Labruna MB, Matioli SR, Tonon AP, et al . Taxonomic and phylogenetic relationships between neotropical species of ticks from genus Amblyomma (Acari: Ixodidae) inferred from second internal transcribed spacer sequences of rDNA. J Med Entomol. 2007;44:222-8. http://dx.doi.org/10.1093/jmedent/44.2.222
Latrofa MS, Dantas-Torres F, Annoscia G, Cantacessi C, Otranto D. Comparative analyses of mitochondrial and nuclear genetic markers for the molecular identification of Rhipicephalus spp. Infect Genet Evol. 2013;20:422-7. http://dx.doi.org/10.1016/j.meegid.2013.09.027
Lv J, Wu S, Zhang Y, Chen Y, Feng C, Yuan X, et al . Assessment of four DNA fragments (COI, 16S rDNA, ITS2, 12S rDNA) for species identification of the Ixodida (Acari : Ixodida). Parasit Vectors. 2014;7:93. http://dx.doi.org/10.1186/1756-3305-7-93
Black WC, Piesman J. Phylogeny of hard- and soft-tick taxa (Acari: Ixodida) based on mitochondrial 16S rDNA sequences. Proc Natl Acad Sci USA. 1994;91:10034-8.
Crampton A, McKay I, Barker SC. Phylogeny of ticks (Ixodida) inferred from nuclear ribosomal DNA. Int J Parasitol. 1996;26:511-7.
Mangold AJ, Bargues MD, Mas-Coma S. Mitochondrial 16S rDNA sequences and phylogenetic relationships of species of Rhipicephalus and other tick genera among Metastriata (Acari: Ixodidae). Parasitol Res. 1998;84:478-84.
Nava S, Guglielmone AA, Mangold AJ. An overview of systematics and evolution of ticks. Front Biosci. 2009;14:2857-77. http://dx.doi.org/10.2741/3418
Leo SST, Pybus MJ, Sperling FA. Deep mitochondrial DNA lineage divergences within Alberta populations of Dermacentor albipictus (Acari: Ixodidae) do not indicate distinct species. J Med Entomol. 2010;47:565-74. http://dx.doi.org/10.1093/jmedent/47.4.565
Anstead CA, Krakowetz CN, Mann AS, Sim KA, Chilton NB. An assessment of genetic differences among ixodid ticks in a locus within the nuclear large subunit ribosomal RNA gene. Mol Cell Probes. 2011;25:243-8. http://dx.doi.org/10.1016/j.mcp.2011.06.002
Beati L, Keirans JE. Analysis of the systematic relationships among ticks of the genera Rhipicephalus and Boophilus (Acari: Ixodidae) based on mitochondrial 12S ribosomal DNA gene sequences and morphological characters. J Parasitol. 2001;87:32-48. http://dx.doi.org/10.1645/0022-3395(2001)087[0032:AOTSRA]2.0.CO;2
Fang Q, Keirans J, Mixson T. The use of the nuclear protein-encoding gene, RNA polymerase II, for tick molecular systematics. Exp Appl Acarol. 2002;28:69-75.
Chitimia L, Lin R-Q, Cosoroaba I, Wu X-Y, Song H-Q, Yuan Z-G, et al . Genetic characterization of ticks from southwestern Romania by sequences of mitochondrial COX1 and nad5 genes. Exp Appl Acarol. 2010;52:305-11. http://dx.doi.org/10.1007/s10493-010-9365-9
Ratnasingham S, Hebert PD. Bold: The Barcode of Life Data System (www.barcodinglife.org). Mol Ecol Notes. 2007;7:355-64. http://dx.doi.org/10.1111/j.1471-8286.2007.01678.x
Hebert PD, Cywinska A, Ball SL, deWaard JR. Biological identification through DNA barcodes. Proc R Soc Lond B. 2003;270:313-21. http://dx.doi.org/10.1098/rspb.2002.2218
Posada D. jModelTest: Phylogenetic model averaging. Mol Biol Evol. 2008;25:1253-6. http://dx.doi.org/10.1093/molbev/msn083
Tamura K, Peterson D, Peterson N, Stecher G, Nei M, Kumar S. MEGA5: Molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Mol Biol Evol. 2011;28: 2731-9. http://dx.doi.org/10.1093/molbev/msr121
Xia X. DAMBE5: A comprehensive software package for data analysis in molecular biology and evolution. Mol Biol Evol. 2013;30:1720-8. http://dx.doi.org/10.1093/molbev/mst064
Librado P, Rozas J. DnaSP v5: A software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data. Bioinformatics. 2009; 25:1451-2. http://dx.doi.org/10.1093/bioinformatics/btp187
Hidalgo M, Orejuela L, Fuya P, Carrillo P, Hernández J, Parra E, et al . Rocky mountain spotted fever, Colombia. Emerg Infect Dis. 2007;13:1058-60. http://dx.doi.org/10.3201/eid1307.060537
Cortés-Vecino JA, Betancourt JA, Argüelles J, Pulido LA. Distribución de garrapatas Rhipicephalus microplus en bovinos y fincas del altiplano cundiboyacense. Corpoica Cienc Tecnol Agropecu. 2010;11:73-84.
Crosbie PR, Boyce WM, Rodwell TC. DNA sequence variation in Dermacentor hunteri and estimated phylogenies of Dermacentor spp. (Acari: Ixodidae) in the New World. J Med Entomol. 1998;35:277-88. http://dx.doi.org/10.1093/jmedent/35.3.277
Cruickshank RH. Molecular markers for the phylogenetics of mites and ticks. Sys Applied Acarol. 2002;7:3-14.
Navajas M, Gutiérrez J, Lagnel J, Boursot P. Mitochondrial cytochrome oxidase I in Tetranychid mites: A comparison between molecular phylogeny and changes of morphological and life history traits. Bull Entomol Res. 1996;86:407-17.
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