Identificación molecular de micobacterias no tuberculosas mediante el análisis de los patrones de restricción, Colombia 1995-2005

Claudia Marcela Castro, Gloria Puerto, Luz Mary García, Dora Leticia Orjuela, Claudia Llerena, María Consuelo Garzón, Wellman Ribón, .

Palabras clave: infecciones atípicas por Mycobacterium, reacción en cadena de la polimerasa, técnicas de diagnóstico molecular, infecciones oportunistas, salud pública

Resumen

Introducción. Las micobacterias no tuberculosas pueden ser saprofitas, patógenas u oportunistas; las enfermedades más comunes producidas por estos microorganismos son las infecciones posquirúrgicas, principalmente por procedimiento estéticos, infecciones asociadas con catéteres, enfermedades cutáneas diseminadas, enfermedades pulmonares y del sistema nervioso central que afectan especialmente a pacientes infectados con el virus de la inmunodeficiencia humana. La identificación fenotípica de las micobacterias no tuberculosas incluye pruebas microbiológicas y bioquímicas, las cuales pueden tomar varias semanas y algunas veces no logran diferenciar entre los miembros de un complejo.
Objetivo. El objetivo fue evaluar la metodología de reacción en cadena de la polimerasaanálisis de restricción, como método de identificación genotípica de micobacterias no tuberculosas aisladas de muestras clínicas que pertenecen a la colección del Instituto Nacional de Salud.
Materiales y métodos. Se estudiaron 70 aislamientos clínicos de micobacterias no tuberculosas, criopreservados en glicerol al 50% e identificados mediante metodologías fenotípicas. La identificación genotípica se realizó por reacción en cadena de la polimerasa-análisis de restricción y se evaluó la concordancia entre las metodologías.
Resultados. Se obtuvo una concordancia del 100% en la identificación de Mycobacterium terrae, M. szulgai, M. avium, M. chelonae y M. scrofulaceum, en las especies M. fortuitum, M. abscessus M. gordonae y M. intracellulare varió de 44% a 89%; no se obtuvo concordancia en la identificación de las especies M. flavescens y M. malmoense.
Conclusiones. El análisis de restricción es una alternativa para la identificación de especies de micobacterias no tuberculosas, rápida, económica y segura para la identificación, que permite la diferenciación entre especies de un complejo y la determinación del subtipo de cada especie.

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  • Claudia Marcela Castro Grupo de Micobacterias, Instituto Nacional de Salud, Bogotá, D. C., Colombia
  • Gloria Puerto Grupo de Micobacterias, Instituto Nacional de Salud, Bogotá, D. C., Colombia
  • Luz Mary García Grupo de Micobacterias, Instituto Nacional de Salud, Bogotá, D. C., Colombia
  • Dora Leticia Orjuela Grupo de Micobacterias, Instituto Nacional de Salud, Bogotá, D. C., Colombia
  • Claudia Llerena Grupo de Micobacterias, Instituto Nacional de Salud, Bogotá, D. C., Colombia
  • María Consuelo Garzón Grupo de Micobacterias, Instituto Nacional de Salud, Bogotá, D. C., Colombia
  • Wellman Ribón Grupo de Micobacterias, Instituto Nacional de Salud, Bogotá, D. C., Colombia

Referencias bibliográficas

1. Brown-Elliott BA, Wallace RJ Jr. Clinical and taxonomic status of pathogenic nonpigmented or late-pigmenting rapidly growing mycobacteria. Clin Microbiol Rev. 2002;15:716-46.
2. Primm TP, Lucero CA, Falkinham JO 3rd. Health impacts of environmental mycobacteria. Clin Microbiol Rev. 2004;17:98-106.
3. Tortoli E. Impact of genotypic studies on mycobacterial taxonomy: the new mycobacteria of the 1990s. Clin Microbiol Rev. 2003;16:319-54.
4. Nuñez-Guzman J, Starke J, Correa A, Graviss E, Pan X, Popek E, et al. A report of cutaneous tuberculosis in siblings. Pediatr Dermatol. 2003;20:404-7.
5. Duttaroy B, Agrawal C, Pendse A. Spinal tuberculosis due to dissemination of atypical mycobacteria. Indian J Med Sci. 2004;58:203-5.
6. Holmes GF, Harrington SM, Romagnoli MJ, Merz WG. Recurrent, disseminated Mycobacterium marinum infection caused by the same genotypically defined strain in an immunocompromised patient. J Clin
Microbiol. 1999;37:3059-61.
7. Murcia-Aranguren MI, Gómez-Marín JE, Alvarado FS, Bustillo JG, de Mendivelson E, Gomez B, et al. Frequency of tuberculous and non-tuberculous mycobacteria in HIV infected patients from Bogotá,
Colombia. BMC Infect Dis. 2001;1:21.
8. Camargo D, Saad C, Ruiz F, Ramírez ME, Lineros M, Rodríguez G, et al. Iatrogenic outbreak of M. chelonae skin abscesses. Epidemiol Infect. 1996;177:113-9.
9. Ortegón M, Rodríguez G, Camargo D, Orozco LC. Mycobacterium chelonae y Mycobacterium abscessus: patógenos emergentes. Biomédica. 1996;16:217-38.
10. Garzón M, Orjuela D, Naranjo O, Llerena C. Micobacterias no tuberculosas en Colombia 1995-2003. Inf Quinc Epidemiol Nac. 2005;10:161-76.
11. León CI, Jiménez Y, López OJ, Pavas J, Bustillo JG, Guerrero MI. Evolución de la asociación micobacteriana HIV-SIDA en Bogotá 1995-2003. Infectio. 2004;8:99.
12. Crespo M, Corral R, Alzate A. Micobacterias no tuberculosas en personas VIH positivas y en personas sin factores de riesgo a la infección. Colombia Med. 1994;25:86-91.
13. León CI. Presencia de las micobacterias no tuberculosas en Colombia. Médicas UIS. 1998;12:181-7.
14. Wang SX, Tay L, Sing LH. Rapid identification of pathogenic rapidly growing mycobacteria by PCR-restriction endonuclease analysis. Ann Acad Med Singapore. 2005;34:137-40.
15. Vélez E. Actividad in vitro de diferentes antimicobacterianos frente a cepas de micobacterias no tuberculosas aisladas en Colombia (tesis). Bogotá:Universidad Nacional de Colombia; 1999.
16. Telenti A, Marchesi F, Balz M, Bally F, Bötter EC, Bodmer T. Rapid identification of mycobacteria to the species level by polymerase chain reaction and restriction enzyme analysis. J Clin Microbiol. 1993;31:175-8.
17. Da Silva C, Misuka S, Cássia D, Cardoso S. Hsp65 PCR-restriction enzyme analysis (PRA) for identification of mycobacteria in the clinical laboratory. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 2001;43:25-8.
18. Devallois A, Goh KS, Rastogi N. Rapid identification of mycobacteria to species level by PCR-restriction fragment length polymorphism analysis of the hsp65 gene and proposition of an algorithm to differentiate 34 mycobacteria species. J Clin Microbiol. 1997;35:2969-73.
19. Brunello F, Ligozzi M, Cristelli E, Bonora S, Tortoli E, Fontana R. Identification of 54 mycobacterial species by PCR-restriction fragment length polymorphism analysis of the hsp65 gene. J Clin Microbiol. 2001;39:2799-806.
20. Rastogi N, Goh KS, Berchel M. Species-specific identification of Mycobacterium leprae by PCR-restriction fragment length polymorphism analysis of the hsp65 gene. J Clin Microbiol. 1999;37:2016-9.
21. Leao SC, Bernardelli A, Cataldi A, Zumarraga M, Robledo J, Realpe T, et al. Multicenter evaluation of mycobacteria identification by PCR restriction enzyme analysis in laboratories from Latin America and the Caribbean. J Microbiol Methods. 2005;61:193-9.
22. Murcia MI, Tortoli E, Menéndez MC, Palenque E, García MJ. Mycobacterium colombiense sp. nov., a novel member of the Mycobacterium avium complex and description of MAC-X as a new ITS genetic variant. Int J Syst Evol Microbiol. 2006;56:2049-54.
23. Tortoli E, Rindi L, Garcia MJ, Chiaradonna P, Dei R, Garzelli C, et al. Proposal to elevate the genetic variant MAC-A, included in the Mycobacterium avium complex, to species rank as Mycobacterium chimaera sp nov. Int J Syst Evol Microbiol. 2004;54:1277-85
24. Leao S, Martn A, Mejía G, Palomino J, Robledo J, Telles Da Silva M, et al. Practical handbook for phenotypic and genotypic identification of Micobacteria. First edition. Brussels: European Commision, International Cooperation for Developing Countries; 2004.
25. Garzón MC, Naranjo ON, Sierra CR, Llerena C, Orjuela DL. Bacteriología del Mycobacterium tuberculosis y de micobacterias no tuberculosas. Manual de Procedimientos. 1ª edición. Bogotá: Instituto Nacional de Salud; 2001.
26. Van Soolingen D, Hermans PW, de Haas PE, Soll DR, van Embden JD. The occurrence and stability of insertion sequences in Mycobacterium tuberculosis complex strains; evaluation of IS-dependent DNA polymorphism as a tool in the epidemiology of tuberculosis. J Clin Microbiol. 1991;29:2578-86.
27. Garzón MC, Naranjo ON, Llerena C, Orjuela DL. Identificación de las micobacterias. Manual de procedimientos. Bogotá: Instituto Nacional de Salud; 2002.
28. Springer B, Stockman L, Teschner K, Roberts GD, Bottger EC. Two laboratory collaborative study on identification of mycobacteria: molecular versus phenotypic methods. J Clin Microbiol. 1996;34:296-303.
29. Byrd TF, Lyons CR. Preliminary characterization of a Mycobacterium abscessus mutant in human and murine models of infection. Infect Immun. 1999;67:4700-7.
30. Maekura R, Okuda Y, Hirotani A, Kitada S, Hiraga T, Yoshimura K, et al. Clinical and prognostic importance of serotyping Mycobacterium avium-Mycobacterium intracellulare complex isolates in human immunodeficiency virus-negative patients. J Clin Microbiol. 2005;43:3150-8.
31. García LM, Garzón M, Orjuela D, Mejía G, Llerena C, Angee D. Mycobacterium tuberculosis y micobacterias no tuberculosas en procedimientos de mesoterapia. Inf Quinc Epidemiol Nac. 2007;12:40-4.
Cómo citar
1.
Castro CM, Puerto G, García LM, Orjuela DL, Llerena C, Garzón MC, et al. Identificación molecular de micobacterias no tuberculosas mediante el análisis de los patrones de restricción, Colombia 1995-2005. biomedica [Internet]. 1 de septiembre de 2007 [citado 29 de marzo de 2024];27(3):439-46. Disponible en: https://revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/206
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